Hemocultivo - Prácticas - Microbiología - Biología, Ejercicios de Microbiología. Universidad de Valencia

Microbiología

Descripción: Prácticas de Microbiología. Ejercitaciones y ejercicios. La realización de un hemocultivo requiere una asepsia absoluta en la extracción.
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INTRODUCCIÓN
La realización de un hemocultivo requiere una asepsia absoluta en la extracción; se desinfecta la zona
de la piel situada sobre la vena que hay que puncionar, los dedos de la persona que realiza aquella y el
tapón del frasco, con tintura de yodo al 3% o podivona yodada. Se pueden utilizar jeringas y agujas
estériles o mejor de un solo uso, o dispositivos desechables que preparan las casas comerciales,
formadas por un tubo de plástico con 2 agujas en sus extremos, una para la punción del paciente y otra
para introducir la sangre en el frasco de cultivo.
El buen momento de la toma es cuando la temperatura empieza a ascender, siempre que el sujeto no
esté sometido a tratamiento antibiótico; en los casos en que no se puede suspender éste, se añade a los
medios penicinilasas, ácido paraaminobenzoico o polietanol sódico al 0.06%. Existen sistemas de
transporte especiales, para la eliminación de antibióticos presentes en sangre por contacto con resinas,
que consiguen la recuperación de bacterias que, de otros modos, no se procedería a su aislamiento.
Mediante la punción venosa se extraen de 5 a 10ml de sangre, que se inoculan directamente sobre los
medios elegidos.
La selección del medio es de gran importancia y en ciertos casos depende del diagnóstico clínico
presuntivo. El ideal para bacterias aerobias es el caldo glucosado en el caso de infección por Brucella
habrá que sembrar otro frasco con un 10% de CO2 (B.abortus). Para anaerobiosis se recomienda el
caldo glucosado o caldo−tioglicolato.
Los medios para practicar el hemocultivo pueden ser líquidos (caldo glucosado, caldo bilis, etc.), sólidos
(mezclando la sangre con agar fundido a 65°C, lo que permite el recuento de bacterias y la observación
de la hemolisis) o difásicos, que reúnen en el mismo frasco la fase sólida (agar) y la líquida (caldo). La
incubación puede realizarse en anaerobiosis o en atmósfera de un 10% de CO2. Las bacterias que se
aíslan en el hemocultivo pueden ser de la flora saprófita de la piel o ambiental, y es necesario valorar
cuidadosamente los resultados obtenidos y repetir el estudio para comprobar éstos.
El aislamiento de microorganismos presentes en la sangre requiere el conocimiento de la intermitencia
y bajo orden de magnitud de la mayoría de las bacteriemias, de la gran variedad de microorganismos
capaces de causar septicemia y de la amplitud de las consideraciones microbiológicas implicadas en el
aislamiento de microorganismos a partir de sangre. Dos variables importantes son:
el momento de recolección de la muestra.el volumen de sangre extraído para el cultivo.
La mayoría de las bacteriemias son intermitentes, de modo que la extracción de sangre para cultivo
debe realizarse con distintos intervalos durante 24 horas. Se ha demostrado que el cultivo de 2 ó 3
muestras de sangre tomadas separadamente dentro de un periodo de 24 horas permite establecer la
causa de bacteriemias clínicamente significativas con una sensibilidad próxima al 100%, mientras que
la sensibilidad de una sola muestra dentro del mismo periodo es del 80−90%. La bacteriemia asociado
con endocarditis bacteriana subaguda usualmente es continua, de modo que con sólo 2 cultivos se podrá
determinar el agente etiológico en casi todos los casos. En consecuencia, es evidente que deben tomarse
2 y preferentemente 3 muestras para cultivo dentro de un periodo de 24 horas y que rara vez es
necesario realizar más de 3 hemocultivos.
La mayoría de las bacteriemias, con excepción de la que se producen en los lactantes, son de bajo orden
de magnitud, en consecuencia debe recogerse un volumen adecuado de sangre para cada serie de
cultivos. Se sugiere extraer 20ml de los adultos y 1−3 ml de lactantes y niños pequeños. Es importante
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considerar el volumen de sangre cultivado y el número de cultivos realizados como variables
independientes, en consecuencia debe evitarse la tentación de extraer en una venipunción un volumen
especialmente grande de sangre e inocularlo luego en varias series de cultivos.
Si bien la frecuencia de recuperación de bacterias a partir de sangre está directamente relacionado con
el volumen de sangre empleado en el cultivo, a su vez los resultados de varias series diferentes están
relacionados con la intermitencia habitual de la bacteriemia. Ambos factores deben ser tenidos en
cuenta cuando se realizan hemocultivos.
En caso de que se sospeche meningococemia o gonocemia deben inocularse medios sin
polianetosulfonato de sodio (SPS) debido a que el polianión es inhibido de algunas cepas de neiserias
patógenas. En todos los hemocultivos restantes debe incorporarse SPS, que posee actividad
antifagocitaria, anticomplemento y anticoagulante, en concentración de 0.025−0.05%.
Existe mayor probabilidad de aislar brucelas si la muestra de sangre se obtiene al comienzo de la
enfermedad y se la inocula en un frasco con medio bifásico (Principio de Castañeda) constituido por un
hidrolizado de soja−caseína en atmósfera con 10% de CO2. Las leptospiras pueden ser recuperadas
sólo en algunos casos durante la 1ª semana de enfermedad y casi nunca después. Se deben inocular unas
pocas gotas de sangre fresca o con anticoagulante en varios tubos que contienen medio semisólido para
cultivo de leptospiras, por ejemplo medio de Fletcher.
Los cultivos deben ser incubados a 30°C durante 2 a 3 semanas y examinados 1 ó 2 veces por semana
con microscopio de campo oscuro o por inmunofluorescencia. La observación directa de la sangre o de
un hemocultivo en campo oscuro debe ser interpretada con precaución debido a la formación de
pseudoespiroquetas "móviles a partir de componentes de la sangre.
Resumen del Sistema Castañeda (Hemoline Trypcase Difásica)
Toma de sangreQuitar la cápsula de baquelita del frasco, limpiar la superficie del tapón de caucho con un tapón de
caucho con un tapón impregnado de alcohol de 70°, y volver a colocar las cápsulas sin apretarlas
fuertemente.
Preparar el dispositivo de extracción (moleta desbloqueada).Desbloquear los manguitos protectores de las agujas, si quitarlos completamente.Preparar el brazo del paciente: aplicar el torniquete ; desinfectar cuidadosamente la epidermis
(tintura de yodo−alcohol 70°). No palpar después de desinfectar.
Quitar el manguito de la aguja para intravenosa (aguja larga, manguito con torunda de algodón
transparente).
Puncionar la vena.Quitar el torniquete. Comprimir la cánula hasta que la sangre alcance la segunda aguja.Quitar la cápsula de baquelita.Quitar el manguito de la segunda aguja y atravesar con ella el tapón de caucho.Aflojar la moleta dejando correr 5 a 10 ml de sangre (graduaciones en la etiqueta, de 5 en 5 ml).Detección de los microorganismosAnaerobios o anaerobios facultativos
Comprimir la cánula por encima de la aguja.Quitar la aguja del tapón de caucho. Limpiar el tapón con un tampón impregnado de alcohol.Sacar la aguja de la vena.Volver la cápsula de baquelita. Mezclar suavemente por inversión e inundar el agar con el
caldo.
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Universidad: Universidad de Valencia
Fecha de la carga: 08/11/2012
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