parte de parasitología, Ejercicios de Farmacia. Universidad de Granada (UGR)
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parte de parasitología, Ejercicios de Farmacia. Universidad de Granada (UGR)

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Asignatura: ABD parasitologia, Profesor: JOAQUINA MARTIN SANCHEZ, Carrera: Farmacia, Universidad: UGR
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PARÁSITO MUESTRA DIAGNOSTICO Observaciones

Filarias Sangre, linfa Directo(Observación microscópio) Larva L1

Trematodos Heces Directo(Observación microscópio) excepto schistosoma

Schistosoma Schistosoma haematobium

(clase de trematodos)

Heces Orina

Sangre

Directo (Observación microscópio)

Realizando la técnica de Kato-Katz. Método de sedimentación/centrifugación

Métodos inmunológicos

Cestodos Heces Directo(Observación microscópio)

En el caso de equinococcus granulosus (hidatidosis) se hace un frotis con la orina o el liquido obtenido por punción.

Teñir con: Tricrómico, Ziehl-Neelsen. Baby modificada.

Nematodos Heces Directo(Observación microscópio) Metodo de Stoll: para Ancylostoma y Ascaris

Cryptosporidium spp Cyclospora cayetanensis

Isospora belli Heces Análisis microscópico tras tinción 
(de ooquistes)

Tinción permanente: Ziehl-Neelsen,

técnica de la safranina (metodo en caliente)

Amebas y flagelados Heces sin formol o MIF Análisis microscópico tras tinción Tinción permanente:

Tricómico, hematoxilina férrica

Flagelados y microsporidios Heces, biopsias o raspados de la mucosa intestinal Análisis microscópico tras tinción

Tinción permanente: Giemsa

(para microsporidios teñir con Cromotropo 2R y una versión modificada en caliente)

Enterobius vermicularis HecesCinta adhesiva (método Graham) Directo

(Observación microscópio) Repetir la prueba durante varios días consecutivos

Strongyloides stercoralis Uncinarias

Trichostrongylus spp Heces Cultivo de heces en placas de agar

Para la estrongiloidosis también: Método de Baermann

Técnica de Harada-Mori

Trichomonas vaginalis (protozoo del tracto genito-urinario)

Exudado o raspado vaginal, secreción uretral o prostática

Sedimento urinario

Análisis microscópico tras tinción: Gram, Giemsa, Azul de metileno

Sedimento entre porta y cubre: movimiento del parasito Cultivo en: Diamond modificado o Agar Columbia

Técnicas inmunodiagnosticas directas basadas ne el uso de anticuerpos monoclonales.

PCR in situ

Tinción de Giemsa es la técnica más sensible. Cultivo a 37ºC y en anaerobios.

Técnicas inmunodiagnosticas indirectas no ya que no se producen anticuerpos

Echinococcus granulosus (tracto genito-úrinario) Orina o liquido obtenido quirúrgicamente

Confirmación por técnicas de imagen e inmunodiagnósticas. Luego examen microscópico tras

tinción.

Tinción permanente: Ziehl-Neelsen, tricrómico, Baxby modificada. Veremos el

quiste hidatidico con el protocolices y sus ganchos.

• Trematodos: Dicrocoelium dendriticum, Fasciola hepática, Fasciolopsis buski, Echinostoma spp,Heterophyes heterophyes, Metagonimus yokogawai, Nanophyetus salmincola, Gastrodiscoides hominis. Schistosoma japonicum, mansoni o haematobium. Clonorchis sinensis. • Cestodos: Diphyllobothrium latum, Taenia solium o saginata, Echinococcus granulosus, Hymenolepos nana o diminuta. • Nematodos: Ascaris lumbricoides, Trichuris trichura, Ancylostoma duodenale o caninum, Necator americanus (uncinarias). Enterobius vermicularis.

- Microfilarias: Brugia malayi, Brugia timori, Wuchereria bancrofti (nocturas o subperiódicas), Loa loa (diurna), Mansonella ozzardi, Mansonella pertans (aperiódicas). • Amebas: Entamoeba histolytica o dispar, Entamoeba coli, Entamoeba hartmanni, Endolimax nana, Iodamoeba butschlii. • Flagelados: Giardia lamblia, Enteromonas hominis, Chilomastix mesnilii, Pentatrichomonas hominis, Dientamoeba fragilis.

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