Docsity
Docsity

Przygotuj się do egzaminów
Przygotuj się do egzaminów

Studiuj dzięki licznym zasobom udostępnionym na Docsity


Otrzymaj punkty, aby pobrać
Otrzymaj punkty, aby pobrać

Zdobywaj punkty, pomagając innym studentom lub wykup je w ramach planu Premium


Informacje i wskazówki
Informacje i wskazówki

Rola macierzy jądrowej w przestrzennej organizacji procesów jądrowych, Publikacje z Biotechnologia molekularna

Artykuł opublikowany w: Postępy biochemii

Typologia: Publikacje

2019/2020

Załadowany 05.08.2020

niebieski
niebieski 🇵🇱

4.8

(24)

226 dokumenty

1 / 10

Toggle sidebar

Ta strona nie jest widoczna w podglądzie

Nie przegap ważnych części!

bg1
Rola macierzy jądrowej w przestrzennej organizacji
procesów jądrowych
The role of the nuclear matrix in the spatial organization
of the nuclear events
ROBERT LENARTOWSKI1, ANNA GOC2
Spis treści:
I. W stęp
II. Me to dy iz ol acj i m aci er zy ją dr ow ej
III . B ud ow a m ac ier zy ją dr ow ej
II I- l. S k ład bio ch em ic zn y m ac ier zy ją dr ow ej
II I-2. Ul tra st ru kt ur a m ac ier zy ją dr ow ej
II I-3. Se kw en cj e D NA zw ią za ne z m a cie rzą j ąd ro wą
IV. Ro la m ac ie rzy j ąd row e j w pr oc esa ch ją dr ow y ch
IV -1. St ru kt ur y m ac ier zy ją dr ow ej w łą czo ne w m e ta bo
liz m R N A
IV - 1 - 1. Fa br yk i t ra ns kr yp cy jn e m iejs ce m s yn
te zy R NA na te re nie NM
IV - l- 2. K ol ok ali za cja p ro ce só w tr an sk ry pc ji i
sk ła da ni a R NA n a ter en ie N M
IV -2. U dzi ał m a cie rz y jąd ro w ej w faz ie S cy kl u k om ór
ko w e go
IV -3. P roc es y na pr aw y D NA p rzy na jm n iej c zę ści ow o są
po w iąz an e z NM
IV -4. D yn am ik a skł ad u pe pt yd ow eg o m a cie rz y j ąd ro
w ej j es t s ko re lo wa na z pr ze bi egi em licz ny ch p ro
ce só w jąd ro w yc h
V. Po ds um o wa ni e
Contents:
I. In tro du ct ion
II. Iso lat ion o f t he n uc lea r ma tr ix
III . S tru ct ure o f the n uc lea r m atr ix
II I- l. Bi oc hem ic al c om po si tio n o f th e nu cl ear m at rix
II I-2. Ul tra st ru ctu re o f t he n uc lea r ma tri x
II I-3. DN A se qu en ce s att ac he d to the nu cle ar sc aff old
IV. R ole o f t he nu cl ea r m a trix in the nu cle ar ev en ts
IV -1. N uc lea r m at rix c om p ar tm en ts in vo lv ed in RN A
m et ab o lis m
IV - 1 -1 . N M tra ns cr ip tio n t ak es t he pl ac e i n t he
t ra ns cri pt ion fac to ri es
IV - l-2 . RN A tr an scr ip tio n an d s pli cin g col oc alis ed
in th e NM
IV -2. N ucl ea r ma tri x in th e S pha se o f t he ce ll cy cle
IV -3. A sso cia tio n o f t he D NA r ep air w ith N M
IV -4. D yn am ic s of th e n uc lea r m atr ix pro tei n c om po si
tio n is co rr ela ted wit h ot he r nu cle ar ev en ts
V. C on clu di ng r em ar ks
W yk az st os ow an yc h s kr ótó w: AR S sek wen cja re plik ują ca
się aut ono mic znie ; C AP bi ałko wi ążą ce cza pecz kę ko ńca 5
mR NA; CT D d om ena C- koń cow a p olim era zy II R NA; DN A
kw as d eok syr ybo nuk lein ow y; Dna zal deo ksy ryb onu klea -
za I; EDT A ety leno dia mi note tra octa n; faz a S - faza rep lika
cji DN A w c yklu k om órk owy m; h nRN A niej edno rod ny
jąd ro wy R NA ; hn RN P nie jed nor odn a jądr ow a r ybo nuk le-
op rote ina; M AR rejon połą cze nia z ma cie rzą jąd ro wą; N M
m acie rz ją dro wa ; Ori mie jsce st artu re plik acji u ss aków ;
RN A kwas ryb on ukle ino wy; Rn aza H ry bon ukl eaza H;
RN P ryb onu kle opro tei ny; S/ MA R r ejon po łącz eni a z ma
ci erzą jąd row ą; S AR rejo n poł ącz eni a z m ac ier zą ją dro wą ;
SC -35 c zyn nik zaa nga żow an y w sk ład anie RN A; SC AF8
po dobn y d o bi ałek SR cz ynn ik w iążą cy dom en ę CT D pol ime ra
zy II R NA; SH g rupy tio low e; Sm b iałk a rd zen iow e
'Dr , : dr, P raco wn ia G ene tyk i, I nsty tut Bio logi i O góln ej i Mol e
ku larnej U MK, ul. Gag arin a 9, 87- 100 T oru ń, e- mail :
go c@ cc. uni. toru n.p l, r lena rt@ eag le.b iol. uni .toru n.p l
cz ąstec zki snR NP; SnR NA mały jąd ro wy RN A; S R biał ka
SR, bo gate w ser yno wo- arg inin ow e r eszty a min okw aso we.
I. Wstęp
Macierz jądrowa (NM) jest strukturą szkieletową
jądra komórkowego przesłanianą przez masy chro-
matyny oraz frakcję białek rozpuszczalnych. Jej uwi
docznienie wymaga sekwencyjnego przemywania
oraz usunięcia zalegającego w jej strukturze DNA.
Struktura ta jest definiowana jako pozostałość jądro
wa, zrąb jądrow y czy tez frakcja biochemiczna opor
na na działanie detergentów oraz wysokich stężeń
soli. W czasopiśmiennictwie polskim została obszer
nie opisana przez prof. Zofię Kiliańskąw ko
lejnych pracach [1-3].
Sposoby pozyskiwania NM wywołują wciąż żywą
dyskusję nad faktem jej istnienia [4]. Sceptycy wska
zu, iż zastosowanie nieznacznie różniących się me
25 2 POSPY BIO CH EMII 48 (4) , 20 02
http://rcin.org.pl
pf3
pf4
pf5
pf8
pf9
pfa

Podgląd częściowego tekstu

Pobierz Rola macierzy jądrowej w przestrzennej organizacji procesów jądrowych i więcej Publikacje w PDF z Biotechnologia molekularna tylko na Docsity!

Rola macierzy jądrowej w przestrzennej organizacji

procesów jądrowych

The role of the nuclear matrix in the spatial organization

of the nuclear events

ROBERT LENARTOWSKI1, ANNA GOC

Spis treści:

I. W stęp II. M eto d y iz o la c ji m a c ie r z y ją d r o w e j III. B u d o w a m a c ie r z y ją d r o w e j I I I - l. S k ła d b io c h e m ic z n y m a c ie rz y ją d ro w e j III-2. U ltr a str u k tu r a m a c ie r z y ją d r o w e j III-3. S e k w e n c je D N A z w ią z a n e z m a c ie rzą ją d r o w ą IV. R ola m a c ie r z y ją d r o w e j w p r o c esa ch ją d r o w y c h IV -1. S tr u k tu r y m a c ie rz y ją d r o w e j w łą c z o n e w m e ta b o lizm R N A I V -1-1. „ F a b r y k i tr a n sk r y p c y jn e ” m iejsce m s y n te zy R N A na te re n ie N M I V - l- 2. K o lo k a liz a c ja p r o c esó w tr a n sk ry p c ji i sk ła d a n ia R N A na te re n ie N M IV-2. U d zia ł m a c ie r z y ją d r o w e j w fa zie S cy k lu k o m ó r k o w eg o IV-3. P ro cesy n a p r a w y D N A p r z y n a jm n ie j c z ę śc io w o są p o w ią z a n e z N M IV -4. D y n a m ik a sk ła d u p e p ty d o w e g o m a c ie r z y ją d r o w ej je s t sk o r e lo w a n a z p rz e b ie g ie m liczn y ch p r o c esó w ją d r o w y c h V. P o d su m o w a n ie

Contents:

I. In tro d u ctio n II. Isolation o f th e n u cle a r m a trix III. S tr u c tu re o f th e n u c le a r m a trix I I I - l. B io ch em ic a l c o m p o sitio n o f th e n u cle a r m atrix III-2. U ltr a str u c tu r e o f th e n u cle a r m a trix III-3. D N A se q u e n ce s a tta c h e d to the n u cle a r sc a ffo ld IV. R ole o f the n u cle a r m a trix in th e n u c le a r ev en ts IV -1. N u cle a r m a trix c o m p a r tm e n ts in v o lv ed in R N A m e ta b o lism I V -1 -1. N M tr a n sc rip tio n ta k e s th e p la ce in the “ tr a n sc r ip tio n fa c to r ie s” I V -l-2. R N A tr a n sc rip tio n an d sp lic in g c o lo ca lised in th e N M IV -2. N u c le a r m a trix in th e S p h a se o f th e cell cycle IV-3. A sso cia tio n o f the D N A r ep a ir w ith NM IV-4. D y n a m ic s o f th e n u cle a r m a trix p rotein c o m p o si tion is c o r r e la te d w ith o th e r n u cle a r e v en ts V. C o n clu d in g r em a r k s

W y k a z sto s o w a n y c h sk ró tó w : A RS — sekw encja replikująca się autonom icznie; C A P — białko w iążące czapeczkę końca 5 ’ mRNA; CTD — dom ena C -końcow a polim erazy II RNA; DNA — kwas deoksyrybonukleinow y; D nazal — deoksyrybonuklea- za I; EDTA — etylenodiam inotetraoctan; faza S -— faza replika cji DNA w cyklu kom órkow ym ; hnRN A — niejednorodny

jądrow y RNA; hnR N P — niejednorodna jąd ro w a rybonukle-

oproteina; M A R — rejon połączenia z m acierzą jądrow ą; NM — m acierz jądrow a; Ori — m iejsce startu replikacji u ssaków; RNA — kw as rybonukleinow y; RnazaH — rybonukleaza H; RNP — rybonukleoproteiny; S/M A R — rejon połączenia z m a cierzą jądrow ą; SA R — rejon połączenia z m acierzą jądrow ą; SC-35 — czynnik zaangażow any w składanie RNA; SC A F8 — podobny do białek SR czynnik w iążący dom enę CTD polim era zy II RNA; SH — grupy tiolow e; Sm — białka rdzeniow e

'Dr, : dr, Pracow nia G enetyki, Instytut Biologii O gólnej i M ole kularnej U M K, ul. G agarina 9, 87-100 Toruń, e-m ail: goc@ cc.uni.torun.pl, rlenart@ eagle.biol.uni.torun.pl

cząsteczki snRN P; SnRNA — mały jądrow y RNA; SR — białka SR, bogate w serynow o-argininow e reszty am inokw asow e.

I. Wstęp

Macierz ją d ro w a (NM ) je s t strukturą szkieletow ą

jąd ra kom órkow ego przesłanianą przez masy chro-

matyny oraz frakcję białek rozpuszczalnych. Jej uw i

docznienie w ym aga sekw encyjnego przem yw ania

oraz usunięcia zalegającego w jej strukturze DNA.

Struktura ta je s t definiow ana ja k o pozostałość ją d r o

wa, zrąb jąd ro w y czy tez frakcja biochem iczna opor

na na działanie detergentów oraz w ysokich stężeń

soli. W czasopiśm iennictw ie polskim została obszer

nie opisana przez prof. Z o f i ę K i l i a ń s k ą w ko

lejnych pracach [1-3].

Sposoby pozyskiw ania N M w y w o łu ją wciąż ży w ą

dyskusję nad faktem jej istnienia [4]. Sceptycy w s k a

zują, iż zastosow anie nieznacznie różniących się m e

252 http://rcin.org.pl POSTĘPY BIO CH EM II 4 8 (4 ), 2 0 0 2

tod izolacji prowadzi do otrzym ania preparatów o

zróżnicow anym składzie biochem icznym. Ponadto

w trakcie pozyskiw ania macierzy jąd ro w ej może do

chodzić do licznych artefaktów w postaci strącania

kom pleksów białkowych, w ypłukiw ania ATP, zm ia

ny stopnia utlenienia poszczególnych składników

N M oraz zjaw iska niespecyficznej polim eryzacji ry-

bonukleoprotein tw orzących w e w n ę trz n ą sieć fibry-

larno-granularną. Jednakże, zakotw iczenie specy

ficznej klasy sekwencji DNA w m acierzy sugeruje

jej udział w tworzeniu strukturalnych i funkcjonal

nych przedziałów w ew nątrzjądow ych. Dlatego też,

niezależnie od tego na ile macierz ją d ro w a o d zw ier

ciedla szkielet jąd ro w y istniejący in vivo, pozostaje

ona niezw ykle użyteczną strukturą w badaniu orga

nizacji ją d ra kom órkow ego i zachodzących tam pro

cesów. Ponadto wyniki ostatnich dośw iadczeń, w

których podobną strukturę N M pozyskiw ano różny

mi metodami izolacji [5], d o w o d z ą iż je s t ona realną

częścią struktury szkieletowej komórki.

II. M etody izolacji macierzy jądrowej

Jed n ą z pierwszych obserw acji m acierzy jądrow ej

było stwierdzenie obecności nierozpuszczalnej frak

cji białek jądrow ych w roztw orach o dużej sile j o n o

wej [ 6 ], Późniejsze dośw iadczenia [7], w których do

datkowo usunięto chrom atynę przez traw ienie nukle-

azami, doprowadziły do w yizolow ania ciągłej, prze

strzennej struktury m acierzy jądrow ej. M etoda izola

cji, rozwinięta przez B e r e z n e y ’ a i C o f f e y ’a w

latach siedemdziesiątych, była m odyfikow ana tak,

by zbliżyć warunki izolacji do fizjologicznych

[ 8 - 1 0 ] i uniknąć pow staw ania licznych artefaktów w

postaci strącania kom pleksów transkrypcyjnych, czy

też niespecyficznych interakcji D N A -N M [8-9, 11].

W poszczególnych metodach zm ienia się zarów no

rodzaj, stężenie i czas działania zw iązku

w ypłukującego frakcję białek rozpuszczalnych i hi-

stony [ 8 , 10, 12-13], rodzaj enzym u użytego do usu

nięcia frakcji DNA [7-8, 11], kolejność ekstrakcji

DNA i białek [7-8, 11] oraz rodzaj detergentu

wypłukującego lipidy [14]. Jed n ą z subteiniejszych

metod izolacji struktury szkieletowej ją d ra rozwinęli

J a c k s o n i in. (1988) [15]. Kom órki z hodowli

płynnej po zatopieniu w agarozow ych m ikrokap-

sułkach poddaw ano lizie, a uzyskane ją d ra k o m ó rk o

we — elektroelucji w obecności izotonicznego bufo

ru. Struktura w yizolow ana tą m eto d ą w y kazyw ała

znaczne podobieństwo do m acierzy jąd ro w y ch

otrzymanych przy użyciu w yższych stężeń substan

cji ekstrahujących [15].

Z ac how anie w trakcie izolacji ciągłości struktury

zrębu jądro w eg o , szczególnie jeg o części wewnętrz-

nej, w y m ag a stabilizacji oddziaływ ań pom iędzy po

szczególnym i jeg o kom ponentam i. Cel ten zostaje

osiągnięty przez:

— bezpośred n ią modyfikację ch e m ic z n ą części

białkowej N M związkam i o w łaściw ościach utle

niających lub sprzęgających [ 1 0 , 14, 16-17],

— poddanie szokowi cieplnem u kom órek lub sa

mych ją d e r kom órkow ych [ 8 , 10, 13, 18],

— inkubację ją d e r kom órkow ych w buforach zaw ie

rających kationy dw uw artościow e [ 8 , 18].

Z astosow anie zw iązków o w łaściw ościach utle

niających prowadzi do zm odyfikow ania grup d o ło

wych peptydów budujących N M , a w konsekwencji

tw orzenia wiązań dw usiarczkow ych, stabilizujących

oddziaływ ania białko-białko. Pogląd ten potw ier

dziły badania z użyciem zw iązków blokujących gru

py SH — pow odow ało to rozpad w ew nętrznej struk

tury m acierzy jądrow ej [10, 14, 16]. N a zubożenie

lub całkow ity rozpad kom ponentu RNP będącego

budulcem sieci fibrylarno-granularnej N M , jak i za

wieszonej w tej sieci struktury resztkow ego jąderka,

w pływ a nie tylko zastosow anie enzym ów rybonukle-

olitycznych. Również zm iana kolejności etapu tra

w ienia rybonukleazam i względem ekstrakcji bufora

mi o w ysokim stężeniu soli w trakcie preparatyki

prow adzi do spadku procentowej zawartości RNA w

preparacie i zaniku wewnętrznej części szkieletu

ją d ro w e g o [10, 14, 16]. Dlatego też otrzymanie

pełnej struktury m acierzy jądrow ej w ym aga zacho

w ania odpow iedniej kolejności poszczególnych eta

pów izolacji oraz obecności zw iązków ham ujących

aktyw ność RNaz. Postuluje się także, że we w zboga

ceniu preparatów N M w składnik RNP dopom aga za

stosow anie inhibitorów enzym ów proteolitycznych

[19].

Inkubacja ją d e r kom órkow ych lub całych k om ó

rek w podw yższonej tem peraturze w środowisku j o

nów dw uw artościow ych, ja k k o lw iek stabilizuje

strukturę N M , może jed n ak w yw oływ ać redystrybu

cję białek w chodzących w jej skład. Ustalenie opty

m alnych w arunków stabilizacji, często różnych dla

każdego z białek, w ym aga porów nania dystrybucji

białek m acierzow ych obserw ow anej m etodam i im-

m unofluorescencyjnym i w perm eabilizow anych ko

m órkach z rozkładem białek w preparatach N M [18,

20]. Jedynie w dośw iadczeniach, w których

posłużono się m etodą zatapiania całych kom órek w

m ikrokapsułkach stabilizacja cieplna je s t zabiegiem

niecelow ym i nie w yw ołuje efektu redystrybucji

białek [ 15].

POSTĘPY BIO CHEM II 4 8 (4 ), 2 0 0 2 http://rcin.org.pl^253

przez specyficzne sekw encje w strukturze szkieleto

wej jąd ra kom órkow ego [ 8 , 37] bądź chrom osom u

[38]. Podstawy pętli chrom atynow ych stanowi spe

cyficzna klasa sekwencji DNA, pozostających w

kontakcie ze strukturą szkieletow ą po ekstrakcji de

tergentem lub wysokim i stężeniami soli [37]. W za

leżności od metody użytej do ekstrakcji białek frak

cji rozpuszczalnej ją d ra interfazowego sekw encje ta

kie nazwano M A R — M a trix A tta ch m e n t R eg io n [7]

lub SAR — S c a ffo ld A sso c ia te d R eg io n [ 8 ]. Zbieżna

lokalizacja obszarów SAR i M A R oraz ich podobie

ństwo w strukturze i funkcji [37, 39-42] um ożliw ia

zastosow anie wspólnej term inologii — S/M AR. Se

kwencje S/M A R początkow o sklasyfikow ano jako

obszary o losowym rozkładzie zakotw iczające pętle

chromatyny w szkielecie m acierzy jądrow ej [43-44],

Podstawy pętli stanow ią obszary DNA o długości

250 pz [37, 45], bogate w pary zasad AT [ 8 , 37,

45-47], wiązane przez liczne miejsca w macierzy

jądrow ej [37] oraz niosące sekwencje rozpoznaw ane

przez topoizom erazę II [37, 45-47]. Poniew aż obec

ność topoizom erazy II stw ierdzono zarów no w struk

turze macierzy jądrow ej [48] ja k i w szkielecie chro

m osom ow ym [49], w ydaje się, że miejsce cięcia dla

tego enzymu może stanowić w skaźnik specyficznej

klasy sekwencji S/M A R oraz obszarów zakotw i

czających DNA w strukturze szkieletowej chro m o

somu. Część sekwencji S/M A R je s t w spólna dla

jąd ra interfazowego ja k i struktury chrom osom u me-

tafazowego [47].

Znaczenie miejsc w iązania do NM uw ydatnia ich

zachow yw anie w toku ewolucji. Potw ierdzają to re

akcje wiązania in vitro [13, 37, 50] jak i in vivo [5 1]

sekwencji DNA zdefiniow anych jak o S/M A R do he-

terologicznych preparatów m acierzy jądrow ej.

Miejscem wiązania DNA je s t zarówno lamina

ułożona brzeżnie w jąd rz e kom órkow ym , ja k i w e w

nętrzna sieć o charakterze RNP [13]. Z ao b se rw o w a

no, że sekwencje S/M A R w yk a zu ją zróżnicow any

potencjał w iązania się do białek NM [13]. O b serw a

cje A m a t i i wsp. (1990) [52] wskazują, że poten

cjał wiązania sekwencji S/M A R powstaje w wyniku

nagrom adzenia miejsc w chodzących w o d działyw a

nie z strukturą NM. M oże to w skazyw ać na istnienie

kilku klas sekwencji S/M A R różniących się pełnioną

rolą strukturalną bądź regulatorową. Stw ierdzono, że

miejscami wiązania do m acierzy jądrow ej m o g ą być

sekwencje o specyficznym składzie nukleotydow ym

jak np. obszary hom ooligonukleotydow e, sekwencje

powtórzone, w tym pow tórzenia mikrosatelitarne i

satelitarne, sekwencje o zm ienionej konformacji

DNA i zaburzonej strukturze nukleosom ow ej czy też

obszary o podwyższonej częstości w ystępow ania se

kwencji wiązanych przez czynniki regulatorowe [39,

42]. Ze strukturą macierzy jądrow ej pozostają

związane także sekwencje centrom erow e [53] oraz

telom erow e [54].

Sekwencje S/M A R stanowiące podstawy pętli

chrom atynow ych nie tylko o dgryw a ją rolę struktu

ralną w organizacji materiału genetycznego. Se

kwencja S/M A R może stym ulow ać poziom som a

tycznej hipermutacji [55] oraz rekombinacji w seg

m encie V K genu IgK [56]. Jako elem enty graniczne

S/MARy izolują przyległe obszary od wzajem nego

wpływu, co pozw ala na zróżnicow anie aktywności

w yznaczanych przez nie dom en transkrypcyjnych

[57] (om ówienie rozdział IV - 1).

Sekwencje S/M A R nie w ykazują ściśle określone

go położenia względem sekwencji kodujących ge

nów. W ystępują zarówno w obszarach regulatoro

wych powyżej m iejsca startu transkrypcji [ 8 , 58-60],

w sekwencji samego genu [37, 50, 58-59, 61], w ob

szarze poniżej części kodującej genu lub w jej bezpo

średnim sąsiedztwie [58-60, 62-63]. Jako elementy

graniczne zam ykają w pętli część genu [47, 60-61],

pojedynczy gen [63] lub grupę genów [ 8 ]. Rozmiar

funkcjonalnych domen pozostaje w zw iązku z w zor

cem aktywności danego obszaru i w aha się od 5 000

do 250 000 pz [ 8 , 35-36, 38, 64-65].

IV. Rola macierzy jądrowej w procesach jądrowych

IV-1. Struktury m acierzy jądrowej w łączone w

m etabolizm RNA

O bserw acje w ykonane przy użyciu konw encjo

nalnej mikroskopii elektronowej dokum entują za

sadnicze podobieństw o ultrastruktury jąd ra kom ór

kowego oraz macierzy jądrow ej. R egresyw ne bar

wienie preparatów EDTA [66-67] prowadzące do

w yróżnienia perichrom atynow ych fibry 1 i i interchro-

m atynow ych ziarnistości (struktur zaangażowanych

w metabolizm jąd ro w y ) wykazało, iż są one odpo

wiednikam i filam entów N M oraz części zasocjowa-

nych z nimi ciał gęstych [23].

I V -1-1. „ F a b r y k i t r a n s k r y p c y j n e ” m ie js c e m s y n te z y R N A n a te r e n ie N M

Wykazano, iż nowo powstały transkrypt, wykryty

dzięki zastosow aniu znakow anego nukleotydu, po

zostaje zasocjow any ze strukturą N M [68-69]. Jego

synteza przebiega w dom enach lub „fabrykach tran

skrypcyjnych” złączonych ze strukturą szkieletu

jądrow ego [ 6 8 , 70]. Dysocjacja dużej podjednostki

polimerazy RNA nie w yw ołuje zmian w ultrastruktu-

POSTĘPY BIO CH EM II 4 8 (4 ), 2 0 0 2 http://rcin.org.pl 255

rze NM. Sugeruje to, że polim eraza II RNA jest dy

namicznym składnikiem struktury szkieletowej [5].

Izolacja N M nie w pływ a na ułożenie przestrzenne

ja k i aktywność en z ym a tyczną skupisk transkrypcyj-

nych obserw ow anych w ją d rz e kom órkow ym

[68-69]. N ow o syntetyzow ane cząsteczki RNA po

zostają zw iązane ze szkieletem jąd ro w y m również w

trakcie transportu na terenie ją d ra kom órkow ego [69,

71]. W mikroskopie fluorescencyjnym zw iązek ten

manifestuje się w postaci szlaków tw orzących trój

wym iarow o rozm ieszczone kanały w yłaniające się z

miejsca transkrypcji [72]. Zaangażow anie macierzy

jądrow ej w proces syntezy RNA potw ierdza obec

ność w jej strukturze licznych czynników transkryp-

cyjnych [73-74] ja k i remodulujących strukturę chro-

matyny [75]. Identyfikacja na terenie N M białek

CAP [76] oraz elem entów strukturalnych jąd e rk a su

geruje włączenie macierzy jądrow ej w syntezę i sze

roko pojęty m etabolizm RNA [32]. Wyniki dośw iad

czeń P h i l i m o n e n k o i wsp. (2001) [5] prow adzą

do wniosku, że transkrypcja nie je s t w ym agana do

utrzymania integralności struktury N M. Szkielet

jądrow y je s t obserw ow any zarów no w kom órkach

wyciszonych ja k i aktyw nych transkrypcyjnie.

Łączenie się DNA genów aktyw nych transkryp

cyjnie z rybonukleoproteinow ym szkieletem m acie

rzy jądrow ej potw ierdza regulatorow ą rolę obszarów

S/MAR [47, 58-59]. Z akotw iczenie sekwencji DNA

w NM zm ienia się w raz z postępem procesu tran

skrypcji [26, 77]. Ostatnie badania d o w odz ą też, że

zasocjowane z N M pozostają aktyw ne transkrypcyj

nie kopie genów podlegających piętnowaniu rodzi

cielskiemu [78].

S/MAR m o g ą być zależne od fazy rozwoju organi

zmu [60], konstytutyw ne [47], ja k i w ykazyw ać spe

cyficzność k o m órkow ą i tkankową, gdy w yznaczają

domeny genów aktyw nych w określonych tkankach

[58-59]. S/M A R spełniają w ów czas rolę sekwencji

regulatorowych o charakterze wyciszaczy i w z m a c

niaczy lub w ykazują zbieżne z nimi położenie [46,

60]. W spólna lokalizacja elem entów regulatorow ych

oraz S/M AR w genie ciężkiego łańcucha p. immuno-

globuliny um ożliw ia precyzyjną regulację jeg o eks

presji [61]. W genie tym obszary S/M A R oskrzydlają

intronowy w zm acniacz IgpE, a dzięki niesionym se

kwencjom wyciszaczy biorą udział w powstaniu spe

cyficznego kom órkow o w zorca ekspresji [79].

W zmacniacz IgpE sam odzielnie jest zdolny do tw o

rzenia m iejsca nadw rażliw ego na D N azęl, w ym aga

jednak obecności sekwencji S/M A R w sp o m a

gających proces otw ierania chrom atyny w celu akty

wacji genu oraz jeg o regulacji w zależności od stanu

rozwoju komórek limfocytów B [80-81]. R ów nież w

genie lekkiego łańcucha immunoglobuliny myszy

miejsce zakotw iczenia w N M mapuje się razem z ele

mentem regulatorowym jakim je st intronowy, specy

ficzny tkankowo w zm acniacz [37, 50]. Obszar

S /M A R-w zm acniacz nie prom uje samoistnie w yso

kiego poziomu transkrypcji genu IgK [82]. O d

działywania obu sekwencji um ożliw iają przeprow a

dzenie demetylacji zależnej od stadium rozw ojow e

go, a w konsekw encji aktywacji genu w sposób spe

cyficzny tkankow o [83]. Synergistyczne od

działywanie obserw ow ane m iędzy opisywanym i ele

mentami a wzm acniaczem położonym w obszarze 3 ’

poniżej części kodującej genu IgK p ro w a d ząd o silnej

stymulacji, a w konsekwencji aktywacji genu [62].

W prow adzanie mutacji do obszaru zdefiniowanego

jako S/M A R w przypadku obu genów Ig prowadziło

do spadku poziomu transkrypcji [80, 82, 84],

S/M A R jak o elem ent regulatorow y je s t zdolny do:

— w zmacniania ekspresji genu oraz selektywnego

znoszenia efektu pozycji w miejscu integracji

konstruktu [85-86],

— oddziaływ ań z elem entami regulatorow ym i i

w prow adzania zmian w aktywności przyległych

obszarów [62, 80],

— otwarcia chrom atyny w wyniku stanu niesparo-

wania obszaru rdzeniow ego sekwencji S/M A R

w yw ołanego naprężeniem torsyjnym [87],

— przewijania naprężenia torsyjnego i um ożliwienia

sw obodnego przebiegu transkrypcji [61],

— zestawiania elem entów regulatorow ych, a przez

to oddziaływ ania na długie dystanse [39].

I V - l- 2. K o lo k a liz a c ja p r o c e s ó w tr a n s k r y p c ji i s k ła d a n ia R N A n a te r e n ie N M

Obecność pośrednich oraz końcow ych produktów

procesu składania transkryptu w N M wskazuje na

udział tej struktury w obróbce hnRNA [12, 88-89]. W

NM stwierdzono zarów no obecność białek Sm, SR

jak i snRNA — biorących udział w składaniu RNA

[12, 15, 34, 90-91]. Czynniki te są obserw ow ane w

dom enach jąd ro w y ch i niektórych skupiskach N M o

charakterze granularnym [90, 92]. Skupiska te m o g ą

odpowiadać ziarnistościom interchrom atynow ym

pozostającym w strukturze macierzy w trakcie jej

izolacji. Zaś białko szkieletu jąd ro w eg o N uM A ,

będące składnikiem filam entów rdzeniow ych z d o l

nym do asocjacji z kom pleksam i zaangażow anym i w

składanie RNA, m ogłoby zakotw iczać je w sieci fi-

brylarno-granularnej [93]. Pierwotny skład splice-

osom ów zw iązanych z m a c ie rz ą ją d ro w ą nie je st w y

starczający do składania RNA i w y m ag a uzupełnie

nia w celu ich aktywacji [89]. Bezpośrednie

powiązanie domen jąd ro w y ch o obu rodzajach a k

256 http://rcin.org.pl POSTĘPY B IO C H EM II 4 8 (4 ), 2 0 0 2

w ssaczym genomie dokum en tu ją brak korelacji po

m iędzy miejscami S/M AR, a miejscami startu repli

kacji. Rozkład ori wydaje się być przypadkow y, a ich

interakcje ze strukturą szkieletu ją d ro w e g o przejś

ciowe i zależne od fazy cyklu kom órkow ego [ 1 2 0 ].

IV-3. Procesy naprawy DNA przynajm niej

częściowo są powiązane z NM

Proces naprawy indukow anych uszkodzeń DNA

też w ydaje się być pow iązany ze strukturą macierzy

jądrow ej [39]. K onform acja chrom atyny genów

zw iązanych z m acierzą ją d ro w ą sprawia, iż sekw en

cje DNA znajdujące się w podstaw ie pętli chromaty-

nowej bądź jej pobliżu m o g ą częściej niż obszary he-

terochrom atynow e podlegać uszkodzeniom w w yni

ku zadziałania czynników m utagennych [121]. Przy

puszczenie to je st zgodne z obserw acjam i przebiegu

procesu naprawy fragm entów D N A uszkodzonych

prom ieniow aniem UV na obszarze N M [39]. Część z

enzym ów naprawczych, ja k polim eraza poli(AD-

P-rybozy) i polimeraza (3 DNA, je st konstytutyw nie

zw iązana ze szkieletem ją d ra kom órkow ego [39].

Przypuszcza się, iż pozostałe składniki system ów na

prawczych mogłyby asocjow ać z N M w wyniku

zm iany swego stopnia ufosforylow ania lub po rozpo

znaniu uszkodzenia w sekwencji DNA. Nie wiadom o

jed n ak ż e czy preferencyjny przebieg napraw y jest

faktycznie zw iązany ze strukturą szkieletu ją d ro w e

go i czy dotyczy wszystkich typów uszkodzeń [39].

IV-4. Dynam ika składu peptydowego macierzy

jądrowej jest skorelow ana z przebiegiem

licznych procesów jądrow ych

B iałka m acierzy jądrow ej ze względu na

w łaściw ości ja k i spełniane funkcje m ożna podzielić

na: w iążące DNA bez ścisłego pow inow actw a do se

kwencji, czynniki transkrypcyjne, białka adaptoro-

we, enzym y i peptydy o zdefiniowanej funkcji oraz

peptydy, których rola nie została poznana [39].

N a każdym etapie rozwoju kom órkow ego w struk

turze macierzy jądrow ej w yróżniono frakcję białek

konstytutyw nych oraz specyficznych rozwojowo

[122]. Także zakończenie okresu różnicow ania i

wzrostu komórki zbiega się z ustabilizowaniem

składu peptydow ego N M i podziałem na dwie zasad

nicze grupy białek — białka konstytutyw ne i specy

ficzne tkankow o bądź kom órkow o [122, 123].

Wśród białek N M wyróżniono:

— enzym y o w łaściw ościach oksydoreduktaz, trans-

feraz [124] w tym acetylotransferaz histonowych

[125], hydrolaz [126] w tym deacetylaz histono

wych [127-128], liaz, izomeraz i ligaz [126] także

w formie aktywnej [125-126],

— białka opiekuńcze [129].

Zm iany w składzie peptydow ym NM są skorelo

wane nie tylko z przebiegiem procesu różnicow ania i

wzrostu kom órkow ego [ 1 2 2 ], ale także fazą cyklu

kom órkow ego [100, 112, 130-133], starzeniem ko

mórki [134], śm iercią komórki [135] oraz w krocze

niem na drogę now otw orzenia [136-137]. Ponadto

N M je st miejscem w iązania receptorów horm onów

steroidowych. Ich oddziaływ anie z akceptorowym i

miejscami w m acierzy pozw ala na generow anie od

powiedzi na hormon poprzez zm ianę aktywności ge

nów w yposażonych w odpow iedni elem ent regulato

rowy [138-139]. Redystrybucja białek N M w różnym

stopniu wiąże się z poziom em ich syntezy oraz ro

dzajem modyfikacji potranslacyjnej, jakiej u leg ają w

danej fazie cyklu [130-135]. D ynam ika ta dotyczy

zarów no białek laminy — lamin zaangażow anych w

rozproszenie i rekonstytucję ją d ra kom órkowego,

ja k i niektórych enzym ów i białek wewnętrznej sieci

N M [100, 112, 130-132]. Szczególnie w ym ow nym

efektem redystrybucji białek N M i reorganizacji

szkieletu jąd ro w eg o je st tw orzona w trakcie podziału

komórki struktura szkieletow a chrom osom u. Część

białek m acierzy jądrow ej pozostaje obecna w tej

strukturze odpow iedzialnej za ułożenie przestrzenne

chromatyny w trakcie podziału [ 140] i uczestniczy w

restytuowaniu interfazowej postaci jąd ra kom órko

w ego [3 1, 141-142].

Rozpoczęcie procesu now otw orzenia skutkuje

zmianami w elektroforetycznym wzorcu białek N M i

jest zw iązane z pojaw ieniem się peptydów najpierw

charakterystycznych dla stanu dysplazji, a następnie

zaaw ansow anego procesu now otw orow ego [136-

137]. Białka te obserw ow ane we w czesnych etapach

norm alnego rozwoju komórki [143] um ożliw iają

diagnozow anie rodzaju now otw oru [136], W trakcie

now otw orzenia część białek szkieletu jądrow ego zo

staje uw olniona do krwi obw odow ej, stanowiąc m ar

ker tego procesu [135], podobnie ja k białka charakte

rystyczne dla stanu dysplazii i nowotworzenia.

Uwalnianie białek NM je s t zw iązane z apoptozą za

chodzącą w kom órkach now otw orow ych i je s t j e d

nym z pierw szych kroków w procesie apoptotycznej

degradacji struktury ją d ra kom órkow ego [144]. D o

datkow o działalność proteolityczna i nukleolityczna

enzym ów aktyw ow anych w trakcie apoptozy prow a

dzi do zniszczenia miejsc oddziaływ ań D N A -N M u

podstaw pętli chrom atynow ych [145-146]. Wyniki

badań klinicznych wskazują, iż N M je st także struk

turą d ocelow ą dla leków o w łaściw ościach antyno-

w otw orow ych [ 1 2 1 ].

258 http://rcin.org.pl POSTĘPY B IO C H EM II 4 8 (4 ), 2 0 0 2

Zdolność do reorganizacji składu peptydowego

N M oraz fakt zakotw iczenia aktywnych transkryp-

cyjnie genów w strukturze macierzy jądrow ej przez

sekwencje S/M A R [58-59] predysponuje NM do

ustanowienia w ielopoziom ow ej regulacji transkryp

cji. Sekwencje S/M AR, m ogą być jednocześnie se

kwencjami regulatorowym i genów lub znajdują się

w ich pobliżu, w spółdziałają z białkami macierzy i

czynnikami zw iązanym i z m acierzą w w ytworzeniu

specyficznego w zorca transkrypcji, charakterystycz

nego dla danej fazy rozwojowej.

V. Podsumowanie

Topografia ją d ra kom órkow ego je s t przedmiotem

badań prowadzonych w wielu laboratoriach na całym

świecie. Uzyskane wyniki ja k dotąd nie pozw alają na

je d n o zn a czn ą odpowiedź, jakie m echanizm y/struk

tury są zaangażow ane w organizację domen ją d ro

wych, ich niezwykle precyzyjnego, skorelow anego

w czasie i przestrzeni układu. W kontekście przedsta

wionych informacji m acierz jądrow a, jak o szkielet

ją d ra kom órkowego o charakterze dynam icznym , de

cydując o specyficznej organizacji chromatyny

wpływałaby na przebieg procesów jądrow ych oraz

przepływ informacji niezbędny do ich skorelowania.

Stanowiłaby więc kolejny, a być może nawet główny,

poziom organizacji procesów jądrow ych.

Artykuł otrzymano 4 kwietnia 2002

Zaakceptowano do druku 24 czerwca 2002

Piśmiennictwo

  1. K i l i a ń s k a Z (1989) Post Biot Kom 16: 61-
  2. K i l i a ń s k a Z (1994) Post Biot Kom 21: 27-
  3. S z y m c z y k P, K i l i a ń s k a Z (1994) Post Biot Kom 21: 133-
  4. H a n c o c k R (2000) Chromosoma 109: 219-
  5. P h i l i m o n e n k o V V , F 1e c h o n J E , H o z a k P (2001) Exp Cell Res 264: 201-
  6. M a y e r D T , G u l i c k A (1942 ) J Biol Chem 146: 433-
  7. B e r e z n e y R , C o f f e y D S ( 1 974) Blochem Biophys Res Com- mun 60: 1410-
  8. M i r k o v i t c h J , M i r a u l t M E , L a e m m l i U k (1984) Celi 39: 223-
  9. R o b e r g e M, Da l i m u s M E , B r a d b u r y E M (1988) 7 A/o/ Biol 201: 545-
  10. B e l g r a d e r P, S i e g e l A J , B e r e z n e y R (1 9 9 1 )7 C eliSci 98:281- 1 1. K i r o v N, D j o n d j u r o v L, T s a n e v R (1984) J M ol Biol 180:601-
  11. G a l i i n a r o H, P u v i o n E, K i s t e r L, J a c o b M (1983) E M B O J 2: 953-
  12. I z a u r r a 1d e E , M i r k o v i t c h J , L a e m m l i U K (1988)./ Mol Biol 200: 111-
  13. K a u f m a n n S H , C o f f e y D S , S h a p e r J H (1981) Exp Cell Res 132: 105-
  14. J a c k s o n D A , Y u a n J , C o o k P R (1988) J Cell Sci 90: 365-
    1. K a u f m a n n S H , S h a p e r J H (1984) Exp Cell Res 155: 477-
    2. N i c k e r s o n J A , K r o c h m a l n i c G, W a n K M , P e n m a n S (1997) Proc Natl Acad Sci USA 94: 4446-
    3. N e r i L M , M a r t e l li A M , M a r a l d i N M (1997 ) M icrosc Res Tech 36: 179-
    4. B e r e z n e y R, B u c h h o l t z L A (1981) Exp Cell Res 132: 1-
  15. M a r t e l li A M , B a r e g g i R, R i e d e r e r B M , M a r u g g R A , N a r d u c c i P (1994) Cell Biol Int 18: 151-
  16. M 1n g u e z A , F r a n c a S, M o r e n o D i a z d e l a E s p i n a S (1994) J Cell Sci 107: 2861-
  17. M o r e n o D i a z d e l a E s p i n a S M (1995 ) Int Rev Cy to I 162B: 75-
  18. B e r e z n e y R, C o f f e y D S (1977) J Cell Biol 73: 616-
  19. F e y E G , K r o c h m a l n i c G, P e n m a n S (1986 ) J Cell Biol 102: 1654-
  20. H e D C , N i c k e r s o n J A , P e n m a n S (1990) J C e llB io l 110: 569-
  21. H o z a k P (1996) Exp Cell Res 219: 267-
  22. P a d r o s M R , G i l e s D M , S u a r e z M D (1997) Cell Biol Int 21: 367-
  23. J a c k s o n D A , C o o k P R (1988) E M B O J 7: 3667-
  24. P a d d y M R (1998) Am J Hum Genet 63: 305-
  25. T a n J H , W o o l e y J C , L e S t o u r g e o n W M (2000) Mol B iol Cell 11: 1547- 3 1. H e D C , M a r t i n T, P e n m a n S (1991) Proc Natl A cad Sci USA 88: 7469-
  26. H o z a k P, C o o k P R , S c h o f e r C, M o s g o l l e r W, W a c h t l e r F (1994) J Cell Sci 107:639-
  27. W a i t z W, L o i d l P (1988) J C e ll Sci 90: 621-
  28. W a n K M , N i c k e r s o n J A , K r o c k m a l n i c G, P e n m a n S (1999) Proc Natl A cad Sci USA 96: 933-
  29. B e n y a j a t i C, W o r c e l A (1976) C e //9: 393-
  30. C o o k P R , B r a z e 11 I A (1976) J Cell Sci 22: 287-
  31. C o c k e r i 11 P N , G a r r a r d W T (1986) Cell 44: 273-
  32. P a u l s o n J R , L a e m m l i U K (1977) Cell 12: 817-
  33. B o u l i k a s T (1995) Int Rev Cytol 162A: 279-
  34. B l a s q u e z V C , S p e r r y A O , G a r r a r d W T (1989) UCLA Symp Molec Cell Biol. New series 95: 273- 4 1. G a r r a r d W T (1990 ) Nucl Acids M ol Biol A: 163-
  35. B o d e J , S c h l a k e T , R i o s - R a m i r e z M, M i e l k e C, S t c n g e r t M, K a y V, K l c h r - W i r t h D (1995) Int Rev Cy tol 162A: 389-
  36. B a s l e r J , H a s t i e N D , P i e t r a s D, M a t s u i S I , S a n d b e r g A A , B e r e z n e y R (1981) Biochemistry 20: 6921-
  37. K u o M T (1982) J Cell Biol 93: 278-
  38. G a s s e r S M , L a e m m l i U K ( 1 9 8 6 ) 0 / 5 0 7 5 :5 1 1 -5 1 8
  39. J a r m a n A P , H i g g s D R (1988) E M B O J 1: 3337-
  40. K a s E , C h a s in L A (1987) J M ol Biol 198: 677-
  41. B e r r i o s M, O s h e r o f f N , F i s h e r P A (1985) Proc Natl A cad Sci USA 82: 4142-
  42. L e w i s C D , L a e m m l i U K (1982) Cell 29: 171-
  43. C o c k e r i 11 P N , G a r r a r d W T (1986) FEBS Lett 204: 5-
  44. C h e n Y, Z h a n g B, Li X, Z h a i Z (1997) FEBS Lett 413: 449- 5 2. A m a t i B, P i c k L, L a r o c h e T, G a s s e r S M (1990) E M B O J 9: 4007-
  45. A m a t i B B , G a s s e r S M (1988) Ceil 54: 967-
  46. d e L a n g e T ( 1 9 9 2 ) 0 / 5 0 7 1 1 : 717- 5 5. B e t z A G , M i l s t e i n C , G o n z a 1e z - F e r n a n d e z A, P a n n e l l R, L a r s o n T, N e u b e r g e r M S (1994) Cell 77: 239-
  47. T a k e d a S, Z o u Y R , B l u e t h m a n n H, K i t a m u r a D, M u l l e r U, R a j e w s k y K (1993) EM BO J 12: 2329-
  48. M i s h r a R K , K a r c h F (1999) 7 Biosci 24: 377-
  49. C i e j e k E M , T s a i M J , O ’ M a l l e y B W (1983) Nature 306: 607-
  50. R o b i n s o n S I , S m a l l D, I d z e r d a R, M c K n i g h t G S , V o g e l s t e i n B (1983) Nucl Acids Res 11: 5113-
  51. G a s s e r S M , L a e m m l i U K (1986) Cell 46: 521- 6 1. C o c k e r i l l P N , Y u e n M i l , G a r r a r d W T (1987) 7 Biol Chem 262: 5394-

POSTĘPY BIO CH EM II 4 8 (4 ), 2 0 0 2 http://rcin.org.pl 259

  1. M i l l e r T E , B e a u s a n g L A , W i n c h e l l L F , L i d - g a r d G P (1992) Cancer Res 52: 422-
  2. G e t z e n b e r g R H , Pi e n t a K J , H u a n g E Y , C o f f e y D S (1991) C ancerR es 51: 6514- 1 3 7. P a r t i n A W , G e t z e n b e r g R H , C a r M i c h a e l M J , V i n d i v i c h D, Y o o J , E p s t e i n J I , C o f f e y D S (1993) Cancer Res 53: 744- 1 3 8. L a u b e r A H , S a n d h u N P , S c h u c h a r d M, S u b r a - m a n i a m M, S p e i s b e r g T C (1995) Int Rev Cytol 162B: 337-
  3. D e F r a n c o D B , G u e r r e r o J (2000) Crit Rev Eukaryot Gene Expr 10: 39-
    1. P i e c k A C , v a n d e r V e l d e n H M , R i j k e n A A , N e i s J M , W a n k a F (1985) Chromosoma 91: 137-
    2. W a n K M , N i c k e r s o n J A , K r o c k m a l n i c G, P e n m a n S (1994) Proc Natl Acad Sci USA 91: 594-
    3. P e n m a n S (1995) Proc Natl Acad Sci USA 92: 5251-
    4. B i d w e l l J P , F e y E G , v a n W i j n e n A J , P e n m a n S, S t e i n J L , L i a n J B , S t e i n G S (1994) Cancer Res 54: 28-
    5. M i l l e r T, B e a u s a n g L A , M e n e g h i n i M, L i d g a r d (1993) Biotechniques 15: 1042-
    6. Z h i v o t o v s k y B , W a d e D, G a h m A, O r r e n i u s S, N i c o t e r a P (1994) FEBS Lett 351: 150-
    7. L a g a r k o v a M A , l a r o v a i a O V , R a z i n S V (1995) J Biol Chem 270: 20239-

POSTĘPY BIO CHEM II 4 8 (4 ), 2 0 0 2 http://rcin.org.pl 261