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GRADO EN BIOLOGÍA
PRÁCTICAS DE BOTÁNICA
CIANOBACTERIAS y ALGAS EUCARIOTAS (PRÁCTICAS 5 y 6)
Objetivos de las prácticas: Observación de materiales representativos de la gran diversidad morfológica de las algas y reconocimiento de los principales grupos dominantes en sistemas de agua dulce o salada.
INTRODUCCIÓN El término “alga” se usa indistintamente para designar organismos fotosintéticos de organización talosa y vida acuática, en general filogenéticamente alejados unos de otros, por lo que forman un conjunto artificial sin entidad taxonómica alguna. En el reconocimiento de los distintos grupos son importantes, entre otros caracteres, la morfología, los pigmentos fotosintéticos, la naturaleza química de los productos de reserva, la cubierta celular y la presencia o no de células flageladas. Su estudio ha sido históricamente muy complejo, porque algunas especies desarrollan diferentes formas a lo largo de sus ciclos de vida.
Los organismos con células procariotas reciben el nombre común de “algas verdeazuladas” o “cianobacterias”, y desde el punto de vista filogenético, no tienen relación directa con el resto y forman parte del reino Eubacteria. Los que cuentan con células eucariotas se separan en una primera aproximación como “algas microscópicas” o “algas macroscópicas” dependiendo de su tamaño, y se incluyen en diversos grupos no relacionados entre sí desde el punto de vista filogenético.
La diversidad de formas de las algas es muy amplia, siendo los siguientes tipos morfológicos los más representativos:
- Formas unicelulares libres: Sin flagelos: 1. Cocoide (una célula esférica) 2. Hemicocoide (una célula no esférica)
Con flagelos – monadoide
- Formas coloniales (muy variables en forma y complejidad): Colonia palmeloide (forma y número de células indefinidas, independencia funcional de las células integrantes) Cenobio (forma y número de células definido, división de trabajo) Tricoide. Forma definida, lineal, con número de células no necesariamente definido que se disponen encadenadas entre sí, en ocasiones con división funcional. En Cyanophyta las paredes celulares se hallan cubiertas por una envuelta de mucílago.
- Formas pluricelulares: Filamentosas. Formadas por una sola fila de células, simple o ramificada. Talo de cladoma (talos ramificados anisocládicos). Cuerpos macroscópicos constituidos por filamentos ramificados tabicados o cenocíticos (=carentes de tabiques entre ellos). 1. Uniaxial. Formado por un eje central, rodeado de células corticales y de aspecto articulado, dividido en nudos y entrenudos. A nivel de los nudos salen ramificaciones cortas (pleuridios). 2. Pluriaxial. Presenta un eje central constituido por finos filamentos de los cuales salen numerosas ramificaciones cortas y engrosadas. Talo pseudoparenquimático. Cuerpos macroscópicos macizos de formas diversas (cilíndrica, laminar, acintada) formados por filamentos densamente agregados que llegan a soldarse formando estructuras que se asemejan a tejidos. Talo laminar. Cuerpos macroscópicos formados por células congénitamente unidas. Su forma y estructura guardan relación con los planos perpendiculares en los que se dividen las células. Son muy finos, pudiendo ser constituidos por una o dos capas de células de espesor. Talo parenquimático. Cuerpos macroscópicos macizos complejos, formados por células congénitamente unidas, producidas como consecuencia de sucesivas divisiones de un único centro de crecimiento, constituyendo verdaderos tejidos. Presentan una diferenciación morfológica y anatómica clara.
CLASIFICACIÓN
División Cyanophyta (= Cyanobacteria ) Organismos procariotas, unicelulares, coloniales o tricoides. Pueden presentar células especializadas, heterocistes y acinetos. Con clorofila a y ficocianina, lo que les otorga el color tan característico que les da nombre de “algas verdeazuladas”. Pueden vivir en casi cualquier sustrato húmedo, incluso tolerar las condiciones más extremas de temperatura. Forman parte importante del plancton marino y de las aguas continentales. De gran importancia en algunos ecosistemas por su capacidad para fijar el nitrógeno atmosférico, así como en procesos de simbiosis.
División Euglenophyta Organismos monadoides, que habitan preferentemente en agua dulce. Sin pared celular, con cubierta interna (periplasto), con mancha ocular. Con clorofila a y b, lo que les otorga un color verde brillante. La mayoría viven en aguas dulces eutrofizadas, pudiendo tolerar o no aguas contaminadas, por lo que ciertas especies son buenas indicadoras de la calidad de las aguas.
División Dinophyta (dinoflagelados) Organismos monadoides. Sin pared celular, con cubierta interna de vesículas (anfiesma), rellenas o no de placas de celulosa. Con clorofilas a y c. Presentan
Práctica 5. Cianobacterias y microalgas.
Objetivos de las prácticas:
- Observación y reconocimiento de los diferentes tipos morfológicos.
- Reconocimiento de los principales grupos.
MATERIALES PARA OBSERVACIÓN Y ESTUDIO
Precaución : no mezclar muestras de botes diferentes, introducir la pipeta siempre en el mismo bote donde estaba.
Muestra de cianobacterias terrícolas (figura 1):
- Observación de tricomas de Nostoc embebidos en masas mucilaginosas ( Cyanophyta = Cyanobacteria ).
Preparación de la muestra: se toma una pequeña porción, se coloca en un porta con una gota de agua, se pone el cubre encima y se presiona ligeramente. Observación al microscopio óptico.
Muestras de agua dulce eutrofizada (figuras 2, 3 y 4):
- Observación de formas unicelulares libres (cocoides y monadoides), coloniales y filamentosas ( Chlorophyta , Euglenophyta , Bacillariophyceae ).
Preparación de la muestra: con una pipeta se toma una gota de agua, se coloca en el porta y se pone el cubre. Observación al microscopio óptico.
Muestra de plancton marino (figura 5):
- Observación de formas monadoides ( Dinophyta )
Preparación de la muestra: con una pipeta se toma una gota de agua, se coloca en el porta y se pone el cubre. Observación al microscopio óptico.
Preparaciones hechas:
- Puentes de conjugación de Spirogyra ( Chlorophyta )
- Desmidiáceas ( Chlorophyta )
- Monadoides ( Dinophyta )
- Otras
Muestras opcionales:
- tierra de diatomeas (frústulos fósiles) (figura 6).
- comprimidos de Spirulina (cianobacterias empleadas como complemento nutritivo).
Figura 1. Tricoides de Nostoc (CYANOPHYTA) con heterocistes
heterociste
Práctica 6. Macroalgas
Objetivos de la práctica:
1. Encuadre en grandes grupos: algas verdes ( Chlorophyta ), algas rojas ( Rhodophyta ), algas pardas ( Heterokontophyta , cl. Phaeophyceae ). 2. Reconocimiento de sus niveles de organización: filamentos y sus derivaciones (cladomas y pseudoparénquimas), laminares y parénquimas complejos. 3. Observación (en su caso) de estructuras reproductoras.
MATERIALES PARA OBSERVACIÓN Y ESTUDIO
Muestras de algas verdes ( Chlorophyta ):
- Codium : cladoma multiaxial, utrículos, gametocistes (figura 1)
- Ulva : lámina distromática (figura 1)
- Chara : cladoma uniaxial calcificado, gametangios (figura 2) Las muestras se observaran de visu y a la lupa Preparaciones para su estudio al microscopio óptico: 1. Codium : se tomará una pequeña muestra que se colocará en un porta con una gota de agua y se pone el cubre.
- Ulva : se realizará un corte transversal, lo más fino posible, sobre un porta con una gota de agua y se pone el cubre.
- “ Enteromorpha ”: talo tubular. Se tomará una pequeña muestra que se colocará en un porta con una gota de agua y se pone el cubre. Muestras de algas rojas ( Rhodophyta ) (figura 3).
- Gelidium corneum : pseudoparénquima
- Corallina y Lithophyllum : pseudoparénquima calcificado
- Polysiphonia: estructuras de reproducción Las muestras se observaran de visu y a la lupa Preparaciones para su estudio al microscopio óptico:
- Gelidium (opcional): se realizará un corte transversal, lo más fino posible, sobre un porta con una gota de agua y se pone el cubre.
- Preparaciones fijas Muestras de algas pardas ( Phaeophyceae ) (figuras 4 y 5)
- O. Fucales ( Ascophyllum , Bifurcaria , Fucus , Pelvetia ): parénquima, diversidad morfológica vegetativa y receptáculos; conceptáculos con oocistes y/o espermatocistes.
- Stypocaulon scoparium : filamentos ramificados, esfácelo (opcional)
- Laminaria : parénquima, diferenciación del talo Las muestras se observaran de visu Preparaciones para su estudio al microscopio óptico:
- Bifurcaria : se realizará un corte transversal de un receptáculo, lo más fino posible, sobre un porta con una gota de agua y se pone el cubre.
- Preparaciones fijas: Fucus vesiculosus
Nota: las muestras pueden pertenecer a otros géneros y/o especies en función de la disponibilidad del material en cada curso académico. Los datos de cada práctica se darán en el transcurso de las mismas.
