CASOS CLINICOS ............., Ejercicios de Ciencias Médicas

¡Descarga CASOS CLINICOS ............. y más Ejercicios en PDF de Ciencias Médicas solo en Docsity!

LA SALUD

PROGRAMA ACADÉMICO DE

GUÍA DE PRÁCTICA

FACULTAD DE CIENCIAS DE LA

SALUD PROGRAMA ACADÉMICO

DE MEDICINA

EXPERIENCIA CURRICULAR:

FISIOLOGÍA

LA SALUD

PROGRAMA ACADÉMICO DE

PRESENTACIÓN

El presente manual pretende ofrecer a nuestros estudiantes de la carrera de Medicina de la Universidad César Vallejo, una programación sistematizada y clara de las actividades que deberá realizar en el laboratorio de Fisiología, en cada uno de los temas del presente ciclo. En esta guía, el alumno encontrará, enumerados y siguiendo una secuencia ordenada, todos los elementos que se requieren en cada una de las prácticas a realizar, desde los objetivos y materiales hasta la explicación detallada de los procedimientos a seguir, mismos que serán guiados por el profesor de laboratorio. INSTRUCCIONES GENERALES ● El estudiante deberá asistir a las prácticas en el horario programado, puntualmente, portando su bata blanca y los equipos de protección personal, mascarilla, cofia o gorro y guantes. Solo se tendrá una tolerancia de 5 minutos para el ingreso. ● Los estudiantes deberán cumplir en todo momento las normas de bioseguridad establecidas en los protocolos. ● Todos los estudiantes deben participar activamente en el desarrollo de las prácticas. ● Los estudiantes tienen la obligación de cuidar todos los equipos y materiales del laboratorio, si por descuido o manejo negligente deterioran los mismos deberán reponerlos. ● Para la evaluación de las prácticas los estudiantes presentarán un informe de la actividad realizada. ● El estudiante que no asista a la clase práctica será calificado con cero.

LA SALUD

PROGRAMA ACADÉMICO DE

PRÁCTICA N°

NORMAS DE BIOSEGURIDAD, MATERIALES Y EQUIPOS DE LABORATORIO

OSMOSIS Y HOMEOSTASIS DEL MEDIO INTERNO

I. OBJETIVOS

Aplicar las normas de bioseguridad durante la realización de las prácticas de laboratorio. Adiestrar al alumno en el manejo del microscopio óptico. Conocer los equipos y materiales de laboratorio de uso común en el laboratorio. Comprobar el fenómeno de Ósmosis mediante la observación de células sanguíneas. II. MATERIALES DE LABORATORIO ✔ Todos los instrumentos y equipos básicos del laboratorio ✔ 1 video sobre Niveles de Bioseguridad ✔ Micropipeta ✔ Puntas para micropipeta ✔ 03 Microscopio óptico. ✔ Agua destilada. ✔ Solución de NaCl (9%) y (20%) ✔ Solución glucosada (10%). ✔ 9 portaobjetos (3 por mesa). ✔ 3 Cronómetros. ✔ 9 cubreobjetos (3 por mesa). ✔ 3 Lancetas. ✔ Algodón con alcohol. III. DESARROLLO DE LA PRÁCTICA Niveles de Bioseguridad El alumno visualiza el video nivel de bioseguridad, forma grupo de 5 personas y elaboran un mapa mental sobre los Niveles de Bioseguridad, detallando el tipo de muestras que se puede analizar en cada uno, la vestimenta más adecuada para trabajar en el laboratorio y las características físicas de los laboratorios según el nivel de bioseguridad.

LA SALUD

PROGRAMA ACADÉMICO DE

Reconocimiento de Materiales y Equipos de Laboratorio

• El alumno observa el material colocado sobre la mesa de laboratorio por su docente.
• El alumno dibuja e indica el nombre y uso de cada uno de los materiales y/o equipos de laboratorio.
• El alumno realiza un cuadro comparativo entre microscopio óptico y microscopio electrónico. Uso y Manejo del Microscopio
• El docente explica las partes del microscopio. OSMOSIS Y HOMEOSTASIS

1. Rotula los 3 portaobjetos con cada una de las concentraciones y agregue a cada uno 10 uL de la solución (cada porta con su propia concentración).
2. Coloque en cada uno de estos una gota de sangre.
3. Deje reposar por 5 minutos cada una de las muestras y observe al microscopio.
4. Anote y describa la forma de los eritrocitos en cada una de las soluciones. IV. CONCLUSIONES a) Los alumnos aplican las normas de Bioseguridad durante la realización de la práctica de laboratorio. b) Los alumnos reconocen el manejo del microscopio óptico como herramienta de trabajo en el campo de las Biología Celular. c) Los alumnos conocen los equipos y materiales de uso común en el laboratorio. d) Se concluye que cuando la célula está en una solución isotónica el agua no difunde y no se altera el volumen celular. e) Célula es una solución hipotónica donde el agua ingresa a la célula provocando que esta se hinche. f) Célula es una solución hipertónica en donde el agua tiende a salir de la célula provocando que ésta se encoja.

LA SALUD

PROGRAMA ACADÉMICO DE

PRÁCTICA N°2 MECÁNICA MUSCULAR

I. OBJETIVOS

Analizar la actividad mecánica del Músculo esquelético y cardiaco en sapo o rana. II. MATERIALES ✔ 03 estimulador eléctrico. ✔ Algodón. ✔ 03 Cronómetros ✔ Jeringuillas de 5ml (02), 10 ml (02) (por mesa). ✔ Equipo de disección con hoja de bisturí. (por mesa) ✔ Libreta para anotar datos. ✔ Seda 40 con aguja #01. (03) ✔ Una ampolla Cloruro de Potasio. ✔ Una ampolla Cloruro de Calcio. ✔ Una ampolla Adrenalina. ✔ Una ampolla Atropina. ✔ 03 Campos estériles ✔ Formol al 1% (15 ml). ✔ Desecador de vidrio ✔ Materiales biológicos: sapos o ranas grandes. (uno por mesa) III. DESARROLLO DE LA PRÁCTICA Se localiza la región ventral, realizando una incisión desde la zona clavicular hasta la región inguinal, separando el esternón con ayuda de una tijera para así observar el corazón y medir los latidos por minuto con ayuda del cronómetro, luego con ayuda de la jeringa se le añaden 4 gotas de cloruro de potasio en la zona externa del corazón con ayuda del cronómetro se cuentan los latidos por un minuto y se anota, finalmente se añaden 4 gotas de cloruro de calcio en la zona externa del corazón con ayuda del cronómetro se cuentan

LA SALUD

PROGRAMA ACADÉMICO DE

los latidos por un minuto. Se realiza una incisión en una de las extremidades inferiores con mucho cuidado solo sacando la piel, dejando descubierto al músculo, colocando las pinzas en la zona proximal y la otra en la zona distal del músculo, conectando el estimulador eléctrico y observando las contracciones musculares. IV. CONCLUSIONES De acuerdo con lo observado durante la práctica, registre y analice los resultados obtenidos. V. EVALUACIÓN Aplicar rúbrica de evaluación (Anexo 1). VI. BIBLIOGRAFÍA: Código de biblioteca

LIBROS/REVISTAS/ARTÍCULOS/TESIS/PÁGINAS

WEB.TEXTO

Libros Digitales Wood AA Wood AW. Physiology biophysics and biomedical engineering [Internet]. Boca Raton: CRC Press; 2012. Disponible en: https://ebookcentral.proquest.com/lib/bibliou cv/detail.action?docI D=

LA SALUD

PROGRAMA ACADÉMICO DE

REFLEJO PLANTAR.

✔ En la planta del pie, deslice un objeto de punta roma, haciendo presión. ✔ Observe: la flexión de los dedos del pie. REFLEJO AQUILIANO. ✔ Se pide al sujeto que flexione la pierna derecha y que la coloque sobre el asiento de una silla; la extremidad izquierda se apoya firmemente en el piso. ✔ En la extremidad flexionada, golpee con el martillo de reflejos sobre el tendón de Aquiles. ✔ Observe la extensión del pie de esta extremidad. REFLEJO PATELAR. ✔ Pida al sujeto que se siente y que cruce la pierna derecha sobre la izquierda. ✔ Localiza el tendón del cuádriceps del muslo derecho (entre la patela y la tuberosidad anterior de la tibia). Con el martillo de reflejos, golpee este tendón. ✔ Observe la extensión de la pierna. REFLEJO FOTOMOTOR. ✔ El explorador y el sujeto se ubican el uno al frente del otro. ✔ El explorador cubre con su mano los ojos del sujeto ✔ Destape uno de los ojos y aplique directamente una fuente de luz (lámpara de bolsillo). ✔ Observe que, inmediatamente, se produce la constricción de la pupila (miosis). ✔ El explorador repite el mismo procedimiento en el otro ojo. REFLEJO CONSENSUAL. ✔ El explorador coloca su mano con los dedos juntos y extendidos (o bien una ficha o tarjeta de trabajo) entre ambos ojos del sujeto, procurando que quede bien aplicada, de tal manera que la luz que se dirija a un ojo no pase al otro. ✔ El explorador acerca una lámpara de bolsillo a la pupila derecha del sujeto. ✔ Observelos cambios que se presentan (miosis), en la pupila izquierda del sujeto. ✔ Repita el procedimiento en el otro ojo. IV. CONCLUSIONES El reflejo osteotendinoso o miotático es el más representativo: se realiza dando un ligero golpe sobre el tendón de un músculo y se produce una contracción refleja súbita, debida al estiramiento rápido del tendón.

LA SALUD

PROGRAMA ACADÉMICO DE

V. EVALUACIÓN

Presentarán un informe de lo observado durante el desarrollo de la práctica. VI. REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS Código de bibliotec a

LIBROS/REVISTAS/ARTÍCULOS/TESIS/PÁGINAS

WEB.TEXTO

Libros Digitale s Maruna P. Examination tests from pathological physiology [Internet]. Prague: Charles University in Prague Karolinum Press; 2015. Disponible en: https://search.ebscohost.com/login.as? direct=trueamp;db=e000xww amp;AN=988948amp;lang=esamp;site= ehost-live Libros Digitale s Wood AA Wood AW. Physiology biophysics and biomedical engineering [Internet]. Boca Raton: CRC Press; 2012. Disponible en: https://ebookcentral.proquest.com/lib/biblioucv/detail.a ction?docID =

LA SALUD

PROGRAMA ACADÉMICO DE

8. Si lo hace demasiado lento hay más dolor en el sujeto y tenderá a retirar su mano.
9. Coloque la gota de sangre en la punta de la tira reactiva.
10. Lea el resultado.
11. Anote sus resultados. IV. CONCLUSIONES Para conocer los valores de glucemia utilizamos un glucómetro, la glucosa de la muestra de sangre se mezcla con sustancias químicas especiales (al unirse la sangre con las enzimas presentes en la tira reactiva) que oxidan la glucosa y producen una corriente de electrones liberados, lo que produce una pequeña corriente eléctrica, el cuantificador, mide la corriente, calcula el nivel de glucosa en la sangre, muestra el resultado y lo almacena en su memoria. Resultado que es analizado por el estudiante. V. EVALUACIÓN: Se presentará informe con los resultados obtenidos durante la práctica. VI. BIBLIOGRAFÍA Código de biblioteca

LIBROS/REVISTAS/ARTÍCULOS/TESIS/PÁGINAS

WEB.TEXTO

616.0756 M

Morrison Treseler K. Laboratorio clínico y pruebas de diagnóstico. México: El Manual Moderno;

1998. Disponible en: https://ucv.primo.exlibrisgroup.com/permalink/ 1UCV_INST/175pp oi/alma 616.07503 P Pagana KD Pagana TJ. Guía de pruebas diagnósticas y de laboratorio. Barcelona: Elsevier;
1999. 1085 p. Disponible en: https://ucv.primo.exlibrisgroup.com/permalink/ 1UCV_INST/175pp oi/alma

LA SALUD

PROGRAMA ACADÉMICO DE

PRÁCTICA N°5 ANATOMÍA DEL CORAZÓN

I. OBJETIVOS

Identificar cada una de las estructuras cardiacas a través de la exploración de las partes externas e internas del corazón, de manera que se afiancen conceptos teóricos de la anatomía cardiaca. II. MATERIALES ✔ Guantes (dos pares por alumno) ✔ Estuche de disección con bisturí ✔ Corazón bovino (uno por mesa) ✔ 03 Bandejas ✔ 03 Campos estériles III. DESARROLLO DE LA PRÁCTICA Tome un corazón y en él reconozca la cara anterior (esternal), la cara diafragmática (inferior) y las caras pulmonares, la base y el ápex o vértice. En la cara anterior o esternal reconozca: ✔ Surco interventricular. ✔ Ápex. ✔ La aurícula derecha (ad) (solo se observa la orejuela de la ad). ✔ El ventrículo derecho (vd)

LA SALUD

PROGRAMA ACADÉMICO DE

PRÁCTICA N°

PRESIÓN SANGUÍNEA EN EL HOMBRE ADULTO

I. OBJETIVOS

El estudiante conocerá los principios fisiológicos de la toma de presión arterial por el método auscultatorio. Adquirir la destreza y habilidades necesarias para realizar una toma precisa y rápida de la presión arterial en el hombre. Interpretar y valorar la determinación realizada de la presión arterial. II. MATERIALES ✔ Tensiómetro (uno por alumno) ✔ Estetoscopio. (dos por mesa) III. DESARROLLO DE LA PRÁCTICA. MÉTODO PALPATORIO

1. Colocar el brazalete y enrollarlo alrededor del brazo de un voluntario que permanecerá sentado y con el brazo extendido sobre la mesa.
2. La porción central del brazalete deberá quedar por encima del tercio interno de la cara anterior del brazo y 3 cm, aproximadamente, arriba del pliegue del codo.
3. Localiza el pulso radial en el mismo brazo.
4. Cierre la válvula de la perilla e insuflar hasta que deje de sentir el pulso radial.
5. Anote la presión que indica el manómetro.
6. Suba la presión en el manguito unos 10 mmHg y abra con cuidado la válvula dejando escapar el aire lentamente.
7. Anote la presión en que se recupera el pulso radial.
8. Deje salir el aire por completo, hasta llegar a 0 mmHg.
9. Todo el procedimiento no debe durar más de un minuto.

LA SALUD

PROGRAMA ACADÉMICO DE

MÉTODO AUSCULTATORIO

1. Realizar la toma de la presión arterial del brazo izquierdo por el método auscultatorio de todos los integrantes del equipo.
2. Coloque el brazalete en el brazo izquierdo.
3. Palpe el pulso braquial inmediatamente abajo del brazalete y antes del pliegue del codo.
4. Coloque las olivas del estetoscopio en sus oídos y el estetoscopio sobre el sitio donde identificó el pulso.
5. Llene de aire el manguito hasta que la presión sea unos 10 mmHg mayor a la presión sistólica medida con el método anterior.
6. Abra la válvula y deje salir el aire lentamente. Escuche los ruidos que se producen cuando la sangre empieza a circular de nuevo (ruidos de Korotkoff). IV. CONCLUSIONES El estudiante aplicará los principios fisiológicos de la toma de presión arterial por el método auscultatorio. El estudiante analizará los resultados obtenidos en la toma de presión por los 2 métodos.

LA SALUD

PROGRAMA ACADÉMICO DE

PRÁCTICA N°

OXIMETRÍA: SATURACIÓN ARTERIAL DE OXÍGENO

I. OBJETIVOS

• Aprender a conocer el funcionamiento y manejo de un oxímetro.
• Comprender la utilidad de la medición de la frecuencia cardiaca y saturación de oxígeno para el control de la salud y prevención del estado de la persona. II. MATERIALES ✔ 03 oxímetros de pulso. ✔ Sujeto de prueba (uno por mesa) ✔ caminadoras o elípticas ✔ cronómetro ✔ algodón ✔ alcohol III. DESARROLLO DE LA PRÁCTICA: Medida de la saturación de Oxígeno. En reposo

1. Encender el oxímetro de pulso.
2. Limpiar y secar el dedo índice, con algodón y alcohol.
3. Colocar el sensor de oxígeno en el dedo índice.
4. Leer y registrar la saturación arterial de oxígeno y la frecuencia cardiaca, 3 veces. Saturación % Frecuencia Cardiaca Primera Medición Segunda Medición Tercera Medición Promedio

LA SALUD

PROGRAMA ACADÉMICO DE

En actividad

1. Realizar actividad física por 5 minutos ya sea en caminadora o elíptica
2. Encender el oxímetro de pulso.
3. Limpiar y secar el dedo índice, con algodón y alcohol.
4. Colocar el sensor de oxígeno en el dedo índice.
5. Leer y registrar la saturación arterial de oxígeno y la frecuencia cardiaca, 3 veces. Saturación % Frecuencia Cardiaca Primera Medición Segunda Medición Tercera Medición Promedio IV. CONCLUSIONES
6. La oximetría es una técnica económica que cuenta con dispositivo portátil fácil de emplear y no requiere de entrenamiento o capacitación profunda.
7. Se obtienen con rapidez resultados y cambios en la saturación de oxígeno, se pueden realizar monitorizaciones constantes.
8. El movimiento disminuye el componente de absorción de la luz pulsátil.
9. Comparar los niveles de saturación entre un individuo en reposo y uno en actividad V. EVALUACIÓN Se entregará informe de lo observado en el desarrollo de la práctica.