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cotropolo microbiologia exposicion, Diapositivas de Microbiología

cotropolo de microbiología para exposicion- metodo de diagnostico

Tipo: Diapositivas

2018/2019

Subido el 16/09/2019

Carla251198.
Carla251198. 🇵🇪

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AÑO DE LA LUCHA CONTRA LA CORRUPCIÓN Y LA IMPUNIDAD”
UNIVERSIDAD PERUANA LOS ANDES
FACULTAD DE MEDICINA HUMANA
TEMA:
CATEDRÁTICO: DR. LORENZO CASTRO GERMANA
TEDRA: MICROBIOLOGÍA
INTEGRANTES:
ALIAGA GARCIA, LEYDI
JULCAPARI MARTINEZ, HELLEN
MARCHENA MARTINEZ, TISZIANA
MONTES RAMO, NICKOL
NÁJERA BARZOLA, LISSET
COPROCULTIVO
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¡Descarga cotropolo microbiologia exposicion y más Diapositivas en PDF de Microbiología solo en Docsity!

“AÑO DE LA LUCHA CONTRA LA CORRUPCIÓN Y LA IMPUNIDAD”

UNIVERSIDAD PERUANA LOS ANDES

FACULTAD DE MEDICINA HUMANA

TEMA:

CATEDRÁTICO: DR. LORENZO CASTRO GERMANA

CÁTEDRA: MICROBIOLOGÍA

INTEGRANTES:

ALIAGA GARCIA, LEYDI

JULCAPARI MARTINEZ, HELLEN

MARCHENA MARTINEZ, TISZIANA

MONTES RAMO, NICKOL

NÁJERA BARZOLA, LISSET

COPROCULTIVO

OBJETIVO:

Determinar el procedimiento seguir por el personal de la

unidad de microbiología en el procedimiento de coprocultivo

INTRODUCCIÓN:

CULTIVO: Crecimiento visible bacteriano, generalmente en

medios sólidos, originada por la multiplicación de una sola

bacteria preexistente.

COPROCULTIVO: examen de Laboratorio para encontrar

organismos en las heces (materia fecal) que puedan causar

enfermedad y síntomas gastrointestinales.

  • INCUBACIÓN: mantenimiento de cultivos bacterianos en

condiciones favorables para su desarrollo y multiplicación.

INÓCULO: alícuota de una muestra o un cultivo bacteriano

que es transferido a un medio de cultivo.

MEDIO DE CULTIVO: medio artificial de sustancias nutritivas,

que pueden ser sólido, semisólido o líquido, necesarias para

el crecimiento y multiplicación bacteriana in vitro.

Medios de Cultivo

1.Siembra primaria

-Agar MacConkey sorbitol

-Agar XDL

2.Medios de enriquecimiento

-Caldo Selenito

-Agua Peptonada (Agua destilada)

2.Siembre secundaria a partir de medio de enriquecimiento

-Agar SS

-Agar TCBS

3.Medios de identificación bioquímicas

-Agar triple azúcar hierro (TSI)

-Agar Lisina de Hierro (LIA)

-Agar Sulfuro-indol-movilidad (SIM)

-Agar Citrato de Simmons

CONSIDERACIONES

GENERALES

Materiales y equipos

-Estufa de 37° C

-Asas de siembra

-Porta y cubre objeto

1.DÍA UNO

Siembra en medios primarios

  1. Verificar que la superficie del medio de cultivo (MacConkey sorbito y XLD) a utilizar se encuentre

completamente seca antes de realizar la siembra.

  1. Tomar con la ayuda de un hisopo, inoculo de la muestra de aquella porción que presente un aspecto

patológico (presencia de moco, sangre, etc)

  1. Colocar el inoculo en un extremo de la placa, mediante un rodamiento.
  2. Realizar la siembra de la placa por agotamiento, según muestra la siguiente figura.
  3. Colocar la placa sembrada en la estufa
  4. Incubar por 18 – 24 horas a 37 ° C.

Siembra en medio de enriquecimiento

  1. Colocar los hisopos utilizados en la siembra primaria en los caldos de enriquecimiento (caldo selenito y

agua peptonada)

  1. Colocar los medios sembrados en la estufa.
  2. Incubar por 18-4 h a 37 °C

PROCEDIMIENTO

C. DIA 3

  1. Realizar las lecturas de las placas sembradas (Agar SS y Agar TCBS)
  2. Seleccionar las colonias sospechosas de bacterias enteropatogenias.
  3. Sembrar las colonias sospechosas en medios para identificación bioquímica.
  4. Realizar las lecturas de los medios de identificación de bioquímica provenientes de Agar

MacConkey sorbitol/ Agar XLD, de identificarse un organismo enteropatógeno realizar su

prueba de hipersensibilidad.

  1. Colocar los medios sembrados en la estufa.
  2. Incubar por 18 – 24 horas a 37 °C.

D. DIA 4

1.Realizar la lectura de las placas sembradas para la prueba de

sensibilidad del enteropatógeno identificado el día anterior.

2.Realizar las lecturas de los medios de identificación bioquímica

provenientes de agar SS y/o agar TCSB, de identificar un organismo

enteropatogeno, realizar su prueba de sensibilidad.

3.Colocar los medios sembrados en la estufa.

4.Incubar por 18 – 24 horas a 37 °C

E. DIA 5

1.Realizar la lectura de las placas sembradas para la prueba de sensibilidad del

enteropatógeno identificado el día anterior.

CARACTERÍSTICAS DE COLONIAS SOSPECHOSAS PARA BACTERIAS

ENTEROPATÓGENAS

Colonias Sospecha clínica

Amarillas, opacas E. coli, Aeromonas sp. ,

Enterobacter sp. ,Hafnia

Amarillas, mucosas Klebsiella sp.

Amarillas, opacas con centro

negro

Citrobacter lactosa positiva

Naranjas, opacas Salmonella typhi

Rojas Shiguella sp. , Salmonella sp.

Rojas con punto negro o

completamente negras

Salmonella sp. ,Proteus sp. ,

Citrobacter lactosa negativa

Agar XLD(Xilosa, Lisina, Desoxicolato)

Colonias Microorganismos

Incoloras, transparentes Shigella sp. Y Salmonella sp.

Transparentes, con centro negro Proteus y Salmonella

Rosadas hasta rojas E. coli

Rosadas, blanquecinas, opacas,

mucosas

Enterobacter sp. , Klebsiella sp.

Agar SS (agar salmonella-Shigella

Agar TCBS (agar tiosulfato-citrato-bilis-sacarosa)

Colonias Microorganismos

Amarillas, planas Vibrio cholerae, Vibrio alginolyticus

Verdes, planas Vibrio parahemolyticus

Diminutas, transparentes o amarillas Enterobacterias y Enterococcus

Agar MacConkey sorbitol

Colonias Microorganismos

Incoloras, transparentes Shigella sp. , Salmonella sp. ,

Aeromonas sp.

Rojas, planas de aspecto seco E. coli

Rojas de aspecto mucoide Enterobacter sp. , Klebsiella sp.