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fundamentos de medios de cultivo y pruebas bioquimicas
Tipo: Resúmenes
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El cristal violeta (colorante catiónico) penetra en todas las células bacterianas (tanto gram positivas como gram negativas) a través de la pared bacteriana. El lugol es un compuesto formado por I2 (yodo) en equilibrio con KI (yoduro de potasio) y Sl (Siulterio), los cuales están presente para solubilizar el yodo, y actúan de mordiente, haciendo que el cristal violeta se fije con mayor intensidad a la pared de la célula bacteriana. El I2 entra en las células y forma un complejo insoluble en solución acuosa con el cristal violeta. La mezcla de alcohol-acetona que se agrega, sirve para realizar la decoloración, ya que en la misma es soluble el complejo I2/cristal violeta. Los organismos gram positivos no se decoloran, mientras que los gram negativos sí lo hacen. Para poner de manifiesto las células gram negativas se utiliza una coloración de contraste. Habitualmente es un colorante de color rojo, como la safranina o la fucsina. Después de la coloración de contraste las células gram negativas son rojas, mientras que las gram positivas permanecen violetas.
El glicocálix, hace referencia a sustancias densas o pegajosas, constituidas por glucanos solubles e insolubles que secretan la mayoría de procariotas, sobre su pared. El glicocálix cumple la función de fijar los microorganismos patógenos a sus huéspedes, hacerlos difíciles de reconocer y destruir por fagocitosis, son adhesinas que intervienen en los procesos de adhesión, agregación y coagregación de las bacterias a las superficies lisas ya sea, de los tejidos, del esmalte de los dientes, las paredes, objetos metálicos o a otras bacterias. Las coloraciones utilizadas para la observación de glicocálix, y cápsula son las denominadas negativas y son: rojo congo, nigrosina y tinta china. Estas coloraciones por tener el ion colorante cargado negativamente, son rechazadas por la cápsula y el glicocálix, dejando la estructura incolora pero coloreando el medio que la rodea. Como resultado se observará un fondo coloreado sobre el cual se observan pequeños agujeros incoloros que corresponden a la cápsula cuando es de escaso diámetro, y al glicocálix cuando el diámetro es más amplio. Si en el proceso de coloración se incluye un colorante básico, este tiñe la pared de la bacteria, observándose coloreada dentro de la cápsula o del glicocálix.
Utilizada para la observación de glicocalix y cápsula. Tiñe el fondo de color negruzco y permite ver los microorganismos sin colorear sobre dicho fondo. De este modo genera el contraste suficiente como para permitir su visualización al microscopio. Para esta tinción se pueden utilizar dos colorantes diferentes: nigrosina o tinta china. En la práctica se utilizará la primera de ellas. La nigrosina es un colorante aniónico de color negro que es repelido por las cápsulas, lo que imposibilita su penetración dentro de los microorganismos. Permite la visualización de cápsulas bacterianas y fúngicas.
La coloración para endosporas, está clasificada como una coloración especial, por demostrar la presencia de esta estructura especial que caracteriza a la bacteria. El poder observar esta estructura es de gran importancia, para determinar el proceso de estudio a seguir, realizar el diagnóstico exacto y dar un tratamiento adecuado al agente infeccioso.
AGAR BAIRD-PARKER: AGAR MUELLER-HINTON:
AGARDNA: agar tripticasa de soya: BACILOS GRAM NEGATIVOS
agar xld:
agar rambach: agar tcbs: VIBRIO agar thayer-martin: NEISSERIA
AGAR BHI (BRAIN HEART INFUSION): HAEMOPHILUS agar almidón: BACILOS GRAM POSITIVOS La molécula del almidón es muy compleja y para su asimilación por las bacterias, estas deben descomponerla(hidrolizarla) en sustancias más simples y fácilmente asimilables. Un gran número de bacterias son capaces de elaborar una enzima amilasa que hidroliza el almidón con formación de maltosa. La maltosa puede ingresar a la célula para ser utilizada. La enzima amilasa es también una enzima extracelular, por lo tanto la demostración de la hidrólisis del almidón puede hacerse tanto en medio líquido como en medio sólido agar palcam: LISTERIA
agar tioglicolato: CLOSTRIDIUM agar malta: ACTINOMICETOS
PRUEBA TSI: PRUEBA LIA:
PRUEBA CITRATO SIMMONS: PRUEBA FENILALANINADE AMILASA:
Detecta la fermentación ácido-mixta. Se acumulan ácidos (acético, fórmico, etc.), relativamente fuertes y bajan el pH del medio hasta 4-5. Dicho cambio de pH se detecta añadiendo un indicador (rojo de metilo) al cultivo