I N F O R M E P R Á C T I C O
D E L A B O R A T O R I O
VIROLOGIA
ESTUDIANTES:
Elvis Jermain Quispe Hernández
Dayhanara Pamela Herrera Tovar
Maria Hilda Peve Sayritupac
DOCENTE:
Santos Elizabeth Ulloa Baca
PERÚ - 2025
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Informe de Laboratorio: Preparación de Soluciones y Diluciones en Virología, Ejercicios de Virología
Este informe de laboratorio detalla la preparación de soluciones y diluciones, crucial en virología. Incluye cálculos para diluciones seriadas y medios de cultivo, desde la precipitación de sales hasta un modelo icosaédrico viral. Ofrece ejercicios prácticos y metodologías paso a paso para estudiantes, facilitando la comprensión de conceptos clave en virología y biología molecular, con enfoque práctico. Explica materiales y métodos para construir modelos virales, integrando teoría y práctica. Presenta ejemplos de diluciones de sacarosa y NaCl, y la determinación de factores de dilución. Este enfoque práctico desarrolla habilidades esenciales y mejora la comprensión de los principios virológicos.
Tipo: Ejercicios
2024/2025
1 / 8
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I N F O R M E P R Á C T I C O
D E L A B O R A T O R I O
VIROLOGIA
ESTUDIANTES:
Elvis Jermain Quispe Hernández
Dayhanara Pamela Herrera Tovar
Maria Hilda Peve Sayritupac
DOCENTE:
Santos Elizabeth Ulloa Baca
PERÚ - 2025
MEM: Medio de cultivo celular versátil para células adherentes y en suspensión; requiere suplementación con suero fetal bovino (SFB) al 10%. DMEM: Versión mejorada de MEM con más aminoácidos y vitaminas; adecuado para diversas células de mamífero. RPMI 1640: Desarrollado para células leucémicas; contiene antioxidantes y vitaminas en altas concentraciones. PBS (Dulbecco): Solución salina usada para lavar células y transportarlas. HBSS: Solución equilibrada utilizada en lavado, transporte y preparación de reactivos. EBSS: Similar a HBSS, usada en el mantenimiento celular. Tripsina-EDTA: Enzima digestiva para disociación celular en cultivo. Colagenasa: Enzima que degrada colágeno, útil en la disociación de tejidos y cultivos primarios.
MARCO TEÓRICO
EJERCICIOS DE SOLUCIONES Y DILUCIONES
- SEMANA 1 “SAN JUAN BAUTISTA” MATERIALES: Hojas Calculadora Figura icosaedro papel crepe hojas de colores papel higienico (^) hisopos (^) silicona tijera regla
MÉTODO 1: PRECIPITACIÓN DE SALES
Luego procedemos a hacer el ARN con el papel crepe, vamos a ir enroscandolo en forma de fideo largo y lo entrelazamos. Ahora hacemos bolitas de papel y las pegamos por toda la forma icoaédrica., y el papel crepe lo ponemos adentro del virus. Luego recortamos 12 pentágonos pequeños con un papel de color o foami, y los pegamos en cada vértice del icosaedro. Por último comenzamos a cortar los hisopos por la mitad y los pegamos por encima de cada vértice del icosaédro. Le pusismos sus partes señalizadas
Cálculos con diluciones La disolución "A" tiene una concentración 2 mM. La disolución "B" tiene una concentración 2 μM. a) ¿Cuántas veces más concentrada es A que B? Sabemos que: 1 mM = 1000 μM , por lo que 2 mM = 2000 μM. 2 μM ya está en micromolar. Por lo tanto, si comparamos ambas concentraciones: 2000 micras\2 micras= Esto significa que A es 1000 veces más concentrada que B. b) ¿Cuál es el factor de dilución para preparar B a partir de A? El factor de dilución es 1000 , es una dilución 1/ ¿Cómo prepararías medio litro de disolución 100 mM de sacarosa si dispones de una disolución 1 M? Mido 50 mL de la disolución stock de 1 M de sacarosa usando una pipeta. Vierto los 50 mL en un vaso de precipitados. Agrego 450 ml de agua destilada poco a poco, mezclando bien para asegurar una distribución uniforme. Verifico el volumen final, hasta completar exactamente 500 mL. Homogeneizar la disolución , agitándola suavemente. ¿Cómo prepararías 200 mL de disolución 200 mM de NaCl si dispones de una disolución 5 M? Procedimiento: Medir 8 mL de NaCl 5 M. Añadir 192 ml de agua destilada. Mezclar bien. Resultado: 200 ml de NaCl 200 mM.
b) ¿Cuál será la concentración relativa tras cuatro de tales diluciones? Tienes una disolución de proteínas y, tras realizar un ensayo de medida de concentración, te das cuenta de que la tendrás que diluir para obtener una lectura de absorbancia fiable. Diluyes la muestra 1:1 tres veces sucesivas y cada una de ellas sigue estando demasiado concentrada. Por último, desesperado, diluyes 1/10 la última muestra que has preparado y por fin la puedes medir. El resultado es 100 μg/mL. ¿Cuál es la concentración de la muestra original? Calcula el factor de dilución sufrido al completar el proceso siguiente: Se añaden 0.5 mL de la disolución de partida a 1.5 mL de diluyente. De la disolución resultante, se toman 0.7 mL y se mezclan con 1.4 mL de diluyente. Finalmente, 1.0 mL de esta disolución se añaden a 19.0 mL de diluyente.
Se prepara una disolución mezclando 2.0 mL de glucosa 15 mM con 3.0 mL de NaCl 0. M. ¿Cuáles son las concentraciones de ambos componentes en la disolución? Se prepara una disolución mezclando 1.0 mL de sacarosa 250 mM con 4.0 mL de NaCl 1.0 M. ¿Cuáles son las concentraciones de ambos componentes en la disolución?