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Microscopía Confocal: Principios y Aplicaciones, Diapositivas de Óptica

Microscopia confocal. Principio de funcionamiento de microscopios fluorescentes y confocales. El corte óptico es el proceso mediante el cual un microscopio ...

Tipo: Diapositivas

2021/2022

Subido el 10/10/2022

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Microscopia confocal
Principio de funcionamiento de microscopios fluorescentes y confocales
El corte óptico es el proceso mediante el cual un microscopio diseñado adecuadamente puede producir
imágenes nítidas de planos focales en el interior de una muestra gruesa. El buen seccionamiento óptico,
a menudo denominado buena profundidad o resolución z, es popular en la microscopía moderna ya que,
por ejemplo, permite la reconstrucción tridimensional (3D) de una muestra a partir de imágenes
capturadas en diferentes planos focales. En microscopía de fluorescencia, los objetos que se encuentran
fuera del plano focal solo interfieren con la imagen si están iluminados y emiten fluorescencia. Esto
agrega una forma adicional en la que el seccionamiento óptico se puede mejorar haciendo que la
iluminación sea específica solo para el plano focal.
En un microscopio confocal de barrido laser se usa iluminación puntual y un orificio en un plano
ópticamente conjugado en frente del detector para eliminar la señal desenfocada: el nombre "confocal"
proviene de esta configuración. La microscopía confocal usa un punto de escaneo o puntos de luz para
iluminar la muestra. Junto con un agujero estenopeico en un plano focal conjugado, este actúa para
filtrar la luz de las fuentes fuera del plano focal para mejorar el corte óptico. La intensidad de la luz
emitida por la muestra es detectada por un detector sensible, generalmente un tubo fotomultiplicador
(PMT) o fotodiodo de avalancha, transformando la señal de luz en una eléctrica que es finalmente
digitalizada para generar las imágenes. Los microscopios confocales trabajan según el principio de la
excitación puntual en la muestra (punto de difracción limitado) y la detección puntual de la señal
fluorescente resultante. De este modo, la microscopía confocal puede definirse como una técnica de
imagen óptica para aumentar la resolución óptica y el contraste de una micrografía, todo lo cual se
consigue mediante el uso de una pieza, denominada iris, diafragma o pinole, que bloquea la luz
desenfocada en la formación de imágenes. La captura de múltiples imágenes bidimensionales (2D) a
diferentes profundidades en una muestra permite la reconstrucción de estructuras tridimensionales (un
proceso conocido como sección óptica) dentro del objeto. Esta técnica se utiliza ampliamente en las
comunidades científicas e industriales y las aplicaciones son muy amplias desde ciencias de la vida hasta
ciencias de los materiales, en óptica cuántica e imágenes de nanocristales y espectroscopía.
Como solo se ilumina un punto de la muestra a la vez, las imágenes 2D o 3D requieren escanear sobre
una trama regular (es decir, un patrón rectangular de líneas de escaneo paralelas) en la muestra. El rayo
se escanea a través de la muestra en el plano horizontal utilizando uno o más espejos oscilantes
(servocontrolados). Este método de escaneo generalmente tiene una baja latencia de reacción y la
velocidad de escaneo puede variarse. Los escaneos más lentos proporcionan una mejor relación señal /
ruido, lo que resulta en un mejor contraste y una resolución más alta.
El grosor alcanzable del plano focal se define principalmente por la longitud de onda de la luz utilizada
dividida por la apertura numérica de la lente objetivo, pero también por las propiedades ópticas de la
muestra. Los cortes sucesivos forman una 'pila Z' que puede ser procesada por cierto software para
crear una imagen 3D o se fusiona en una pila 2D.
La microscopía confocal proporciona la capacidad para el seccionamiento óptico en serie directo, no
invasivo, de especímenes vivos, gruesos y vivos, con un mínimo de preparación de muestras y una
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Microscopia confocal

Principio de funcionamiento de microscopios fluorescentes y confocales

El corte óptico es el proceso mediante el cual un microscopio diseñado adecuadamente puede producir imágenes nítidas de planos focales en el interior de una muestra gruesa. El buen seccionamiento óptico, a menudo denominado buena profundidad o resolución z, es popular en la microscopía moderna ya que, por ejemplo, permite la reconstrucción tridimensional (3D) de una muestra a partir de imágenes capturadas en diferentes planos focales. En microscopía de fluorescencia, los objetos que se encuentran fuera del plano focal solo interfieren con la imagen si están iluminados y emiten fluorescencia. Esto agrega una forma adicional en la que el seccionamiento óptico se puede mejorar haciendo que la iluminación sea específica solo para el plano focal.

En un microscopio confocal de barrido laser se usa iluminación puntual y un orificio en un plano ópticamente conjugado en frente del detector para eliminar la señal desenfocada: el nombre "confocal" proviene de esta configuración. La microscopía confocal usa un punto de escaneo o puntos de luz para iluminar la muestra. Junto con un agujero estenopeico en un plano focal conjugado, este actúa para filtrar la luz de las fuentes fuera del plano focal para mejorar el corte óptico. La intensidad de la luz emitida por la muestra es detectada por un detector sensible, generalmente un tubo fotomultiplicador (PMT) o fotodiodo de avalancha, transformando la señal de luz en una eléctrica que es finalmente digitalizada para generar las imágenes. Los microscopios confocales trabajan según el principio de la excitación puntual en la muestra (punto de difracción limitado) y la detección puntual de la señal fluorescente resultante. De este modo, la microscopía confocal puede definirse como una técnica de imagen óptica para aumentar la resolución óptica y el contraste de una micrografía, todo lo cual se consigue mediante el uso de una pieza, denominada iris, diafragma o pinole, que bloquea la luz desenfocada en la formación de imágenes. La captura de múltiples imágenes bidimensionales (2D) a diferentes profundidades en una muestra permite la reconstrucción de estructuras tridimensionales (un proceso conocido como sección óptica) dentro del objeto. Esta técnica se utiliza ampliamente en las comunidades científicas e industriales y las aplicaciones son muy amplias desde ciencias de la vida hasta ciencias de los materiales, en óptica cuántica e imágenes de nanocristales y espectroscopía.

Como solo se ilumina un punto de la muestra a la vez, las imágenes 2D o 3D requieren escanear sobre una trama regular (es decir, un patrón rectangular de líneas de escaneo paralelas) en la muestra. El rayo se escanea a través de la muestra en el plano horizontal utilizando uno o más espejos oscilantes (servocontrolados). Este método de escaneo generalmente tiene una baja latencia de reacción y la velocidad de escaneo puede variarse. Los escaneos más lentos proporcionan una mejor relación señal / ruido, lo que resulta en un mejor contraste y una resolución más alta.

El grosor alcanzable del plano focal se define principalmente por la longitud de onda de la luz utilizada dividida por la apertura numérica de la lente objetivo, pero también por las propiedades ópticas de la muestra. Los cortes sucesivos forman una 'pila Z' que puede ser procesada por cierto software para crear una imagen 3D o se fusiona en una pila 2D.

La microscopía confocal proporciona la capacidad para el seccionamiento óptico en serie directo, no invasivo, de especímenes vivos, gruesos y vivos, con un mínimo de preparación de muestras y una

mejora marginal en la resolución lateral. Las muestras a menudo se tratan con tintes fluorescentes para hacer que los objetos seleccionados sean visibles y/o aprovechando sus propiedades autofluorescentes.

Parámetros básicos de análisis.

La m. confocal de barrido laser genera informacion multidimensional, por pixel, por combinaciones de los siguientes parametros:

  • Multicolor: atendiendo al número de laseres y detectores del sistema utilizado es posible identificar más de 8 fluorescencias distintas.
  • Cuantificacion: es posible correlacionar intensidad de luz con abundancia de material.
  • Temporal: los registros pueden realizarse acorde a intervalos regulares de tiempo (microsegundos a horas)
  • Espacial: información x, y, z en la muestra.

Las aplicaciones de la m. confocal son innumerables y atendiendo al tipo de muestra analizada permite diversas aproximaciones al estudio de procesos bioquímicos y/o celulares tanto en muestras materiales como biológicas. En algunos casos, el m. confocal puede, además, ser utilizado a modo de m. electronico de barrido, de modo que podemos generar superficies atendiendo a las propiedades de reflexion del material.

The m. Confocal laser scanning generates multidimensional information, by pixel, by combinations of the following parameters:

  • Multicolor: depending on the number of lasers and detectors of the system used it is possible to identify more than 8 different fluorescents.
  • Quantification: it is possible to correlate intensity of light with abundance of material.
  • Temporary: records can be made according to regular time intervals (microseconds to hours)
  • Spatial: information x, y, z in the sample.

The applications of the m. confocal are innumerable and depending on the type of sample analyzed allows various approaches to the study of biochemical and / or cellular processes in both material and biological samples. In some cases, the m. confocal can also be used as a m. electronic scanning, so that we can generate surfaces taking into account the reflection properties of the material.