PRACTICAS, Ejercicios de Ingeniería Agronómica

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PRÁCTICAS DE FITOTECNIA Bases de la producción vegetal David Badía Clara Martí Asunción Usón Prensas Universitarias de Zaragoza Índice PRÓLOGO connnnciniorocoonnnnimrcatr e raermmair 1, INFLUENCIA DE LA LUZ EN EL CRECIMIENTO DEL GUISANTE 1,1. Introducción 1.2. Objetivos ... 1.3. Metodología 1.3.1. Tratamientos y siembra 1.3.2, Experiencia 1: Efecto de la luz en el porcentaje de nascencia . 1.3.3. Experiencia 2: Efecto de la luz en el crecimiento 1.4. Resultados y discusión 1,5. Cuestiones .... 1.6. Bibliografía .. 2, INFLUENCIA DE LA LUZ Y LA TEMPERATURA EN LA PRODUCCIÓN DE PLEUROTUS OSTREATUS . 2.1. Introducción: formas de vida de los hongos 2.2. Objetivos .. 2.3. Metodología .... 2.4. Resultados y discusión 2.5. Cuestiones c.mmmom 2.6. Bibliografía . Anexo l..... 3. PREPARACIÓN DE INÓCULO MICELIAR DE PLEUROTUS OSTREATUS 3.1. Introducción 3.2. Objetivos 3.3. Metodología 3.3.1, Preparación de inóculo en placas Petri 3.3.2, Multiplicación de micelio para comercialización 3,4, Resultados y discusión 3.5. Cuestiones 3.6. Bibliografía . Anexo 1 .... 0000 10 10 10 11 13 13 15 15 icas de Fitotecnia 25 25 26 26 27 27 29 29 30 30 30 31 33 Índice 7.4. Resultados y discusión 7.5. Bibliografía ...... AÑexO lomcncnno . DETERMINACIÓN DE PROPIEDADES FÍSICAS DEL SUELO: CONDUCTIVIDAD HIDRÁULICA Y POROSIDAD . 8.1. Introducción . 8.2. Objetivos 8.3. Metodología . 8.3.1. Experiencia 'onductividad hidráulica saturada (Ks) .. 8.3.2. Experiencia 2: Porosidad 8.4. Resultados y discusión 8.5. Bibliografía . AMEXO Decnnanccnnnancononnencanrnnrcanosorcarrarncnnrcnrcnnronrsaro sar snrrnorsorsrr0sonenrrronearrarasenirsro . CUANTIFICACIÓN DE MICROORGANISMOS EDÁFICOS . 9.1. Introducción 9.2. Objetivos ... 9.3. Metodología cren 9.3.1. Tratamientos y medios de cultivo 9.3.2. Procedimiento 9.4. Resultados y discusión 9.5. Cuestiones , 9.6. Bibliografía .. 10.EFECTO DE LAS PRÁCTICAS CULTURALES SOBRE LA EROSIÓN DE SUELOS AGRÍCOLAS: SIMULACIÓN DE LLUVIA 10.1. Introducción ............ 10.2. Objetivos ... 10.3. Metodología 10.4. Resultados y discu 10.5. Cuestiones . 10.6. Bibliografía Anexo 1 ..... 2. .FERTILIZACIÓN ORGÁNICA Y MINERAL: EFECTOS EN EL DESARROLLO VEGETAL 11,1. Introducción .omccnocarcnnrcnrsrenrcarrenrnoos 119 49 49 50 120 Prácticas de Fitotecnia 11.2. Objetivos ... mi 11,3, Metodología nm 11.3.1. Tratamientos NE 11.3.2. Siembra 11.3.3. Experiencia 1: Porcentaje de nascencia en bandejas 11.3.4. Experiencia 2: Evolución del peso fresco . 11.4. Resultados y discusión ...ocmrrmcerom 76 11.5. Cuestiones . 76 11.6. Bibliografía T Anexo 1: Diseño experimental Anexo 2 .. Anexo 3. 12. DEFICIENCIAS MINERALES EN JUDÍA 12.1. Introducción 12.2. Objetivos .... 12.3. Metodología 12.3.1. Tratamientos 123.2, Procedimiento 12.3.3. Mantenimiento . 12.4. Resultados y discusión 12.5. Cuestiones . 12.6. Bibliografía 13. INFLUENCIA DE LA FERTILIZACIÓN SOBRE LA CALIDAD DEL CULTIVO . 13.1. Introducción 13.2. Objetivos ... 13.3. Metodología 13.3.1. Tratamientos 13.3.2. Procedimiento 13.4. Resultados y discusión 13.5, Cuestiones .. 13.6. Bibliografía 14. PREPARACIÓN Y SEGUIMIENTO DEL PROCESO DE COMPOSTAJE DE RESIDUOS AGRÍCOLAS 14.1. Introducción . 14.2, Objetivos ... Índice 14.3, Metodoli 14,3.1.Pi 14.3.2,.R: 14.4. Resultad 14.5, Bibliogn AÑeXO loca 15. DESCRIPCIÓ 15.1. Introduo 15.2, Objetivo 15.3. Metodol 15.4. Bibliogr Anexo 1. Anexo 2 . 16.CALIDAD Y” 16.1. Introdua 16,2. Objetiva 16.3. Metodol 16.4. Resultad 16.5. Bibliogr Anexo l ......... 17.PREPARACK 17.1. Introdué 17.2. Objetivi 17,3. Descrip 17.3.1£ 173.28 17.3.3.€ 17.34.) 17.3,5.H 173.64 17.371 17.3.8.1 17.4. Cuestioj 17.5. Bibliog 1. Influencia de la luz en el crecimiento del guisante 1.1 Introducción El crecimiento y la diferenciación de las plantas superiores no sólo es el resultado de la morfogénesis y del aumento irreversible de la biomasa sino que también comprende diferentes respuestas a factores externos. Uno de estos factores es la luz. Es la fuente de energía de la que dependen las plantas y tiene una función muy importante en la regulación de todo el ciclo biológico. Sus efectos pueden ser indirectos, a través del rendimiento fotosintético, o directos, interviniendo en la orientación de la planta respecto a la fuente de luz (fototropismo) y en la regulación de los distintos procesos del desarrollo, tanto diarios como estacionales (fotoperiodismo). La abundancia de luz favorece la floración y la fructificación, intensifica la producción de pigmentos y la actividad fotosintética y modifica el crecimiento en altura. 1.2 Objetivos Comparar el crecimiento (elongación, peso fresco, peso seco) y el contenido de pigmentos de plantas de guisante de mata baja (Pisum sativum) sometidas a diferentes condiciones de iluminación. 1.3 Metodología Cada grupo de prácticas dispondrá del siguiente material: 10 Prácticas de Fitotecnia - 20 semillas de guisante - Etiquetas - 2 bandejas con vermiculita - Medidor de clorofila (SPAD) - Bolsas de papel - Estufa - Papel de filtro - Balanza - Plástico negro - Cámara de cultivo! invernadero 1.3.1 Tratamientos y siembra La germinación y el crecimiento de las plantas de guisante se realizará bajo dos condiciones lumínicas. Con oscuridad (O), colocando las bandejas en el interior de una bolsa de plástico negro, y con luz (L), manteniendo las bandejas en el invernadero o en la cámara de cultivo. Cada grupo de prácticas deberá separar los guisantes en dos grupos de 10 unidades cada uno y los pesará. Posteriormente se sembrarán en bandejas con vermiculita (etiquetadas con el número de grupo y el tratamiento) y se colocarán en la oscuridad y en luz, respectivamente. Se mantendrán en estas condiciones durante dos semanas, procurando que no les falte agua mientras dure el experimento. 1,3.2 Experiencia 1: Efecto de la luz en el porcentaje de nascencia Al cabo de una semana se realizará el conteo de plántulas que vayan emergiendo de la superficie del sustrato. Éste se realizará, también, transcurridas dos semanas. 1.3.3 Experiencia 2: Efecto de la luz en el crecimiento Transcurrida una semana, se medirá la altura de cada una de las plántulas. También se medirá el contenido clorofilico y la longitud de los diferentes entrenudos (si es posible). Estas determinaciones se repetirán en la segunda semana. Finalizadas las segundas medidas, se extraerán cuidadosamente las plantas del sustrato de crecimiento, se procederá a lavar abundantemente la zona radicular para eliminar la vermiculita, se secarán con papel de filtro y se separará Luz y desarrollo la parte aérea de la púa determinar su peso frel identificadas. Se introdl pesarán nuevamente pará . E 1.4 Resultados Representar el pord porcentaje de nascencia 3 de las plántulas, según t (días) = siendo: d. día de cosecha $ dx día x de expe: Px n. de plántulas] Po 1. de plántulas siguiente: presentar una tabla en la mg g” y la longitud del 1.1). El valor x de la e de clorofila. Tras el correspond formato similar al de la ta Prácticas de Fitotecnia Semana 1 Semana 2 Trat Z Long. entrenudos Long. entrenudos 1 2 3 4 ci 1 2 3 4 raíz 9] Luz Vo Jamas No o Osc. VAS na wn |» o e TABLA 1.1. Efecto de la luz en el crecimiento de las plantas de guisante Luz y desarrollo 1.6 Bibliografía 1 BADIA, D., MEIRL, A. | esculentum MilL) to sé (124): 301-310. BARCELÓ, J., NICOLÁS, 42 ed. Pirámide. Madri SOLER, C. (2001). Asimila la aplicación de distil denominación de origak URBANO, P. (1992). Tra Prácticas de Fitotecnia Luz y desarrollo 13 Semana 2 Luz Oscuridad udos Peso (mg) Tallo y hojas Raíces Tallo y hojas Raíces 3 4 [raíz| (CO Fresco Seco TABLA 1,2. Peso de las plantas de guisante en luz y oscuridad (promedio de 10 plantas/tratamiento) 1.5 Cuestiones - ¿Qué se puede concluir del efecto de la luz sobre la germinación? ¿Y sobre el crecimiento? - Delos parámetros medidos en esta práctica, ¿cuál(es) parece(n) más útiles)? - -¿Cómo se explica la variación del peso en las plantas de cada tratamiento? - ¿Se puede concluir que la ausencia de luz estimula el crecimiento? - ¿Qué ocurriría si las plantas se mantuvieran más tiempo en la oscuridad? - ¿Cómo ha variado la longitud de los entrenudos en ambos tratamientos? Razonar. : 1.6 Bibliografía BADIA, D., MEIRI, A. (1994). Tolerance of two tomato cultivars (Lycopersicum . esculentum Mill.) to soil salinity during emergence phase. Agricoltura Mediterranea (124): 301-310, BARCELÓ, J., NICOLÁS, G., SABATER, B., SÁNCHEZ, R. (1987). Fisiología vegetal. 42 ed. Pirámide. Madrid. SOLER, C. (2001). Asimilación nutricional y tratamiento de la clorosis férrica, mediante de las plantas de guisante la aplicación de distintos productos en la variedad Cabernet-sauvignon en la denominación de origen somontano TEC-ITT, EUP-Huesca. URBANO, P. (1992). Tratado de Fitotecnia General. 27 ed. Mundi-Prensa, Madrid. Prácticas de Fitotecnia es necesario conocer mejor los tura, etc.) que influyen en el Pa ostreatus, y de sus les; ón estacional y la producción pes ambientales en las que se comercial de setas para cuatro ambientales distintas (cuatro fatura) a lo largo del período de fas con Pleurotus ostreatus para han recibido el inóculo y han mes de temperatura, humedad y imiento del micelio fúngico. A los cuerpos fructíferos oRetas, bala del sustrato inoculado e y temperatura. colocando las balas en la parte e inferior cubierta de plástico Producción de setas 17 negro (oscuridad). El incremento de temperatura se conseguirá instalando una estufa en una parte del habitáculo, frente al resto, que estarán a la temperatura del invernadero. Los tratamientos resultantes serán: -Balas con Luminosidad alta y Temperatura alta (tratamiento LaTa), situadas encima de mesas, en el habitáculo con estufa. -Balas con Luminosidad alta y Temperatura baja (tratamiento LaTb), situadas encima de mesas, en el habitáculo sin estufa. -Balas con Luminosidad baja y Temperatura alta (tratamiento LbTa), situadas bajo mesas, en el habitáculo con estufa, -Balas Luminosidad baja y Temperatura baja (tratamiento LbTb), situadas bajo mesas, en el habitáculo sin estufa. Se procederá a retirar los plásticos circulares externos de la misma, dejando aberturas por donde surgirán las setas. Al menos, un día a la semana (el día y hora de prácticas que corresponda a cada grupo) se procederá a recoger las setas y pesarlas. Se medirán la temperatura y humedad en el invernadero mediante un termohidrógrafo y en el interior de las balas mediante una sonda de humedad y temperatura. Cada grupo anotará los datos de manera individual y también en el estadillo del invernadero para poder comparar los resultados entre grupos (anexo D. 2.4 Resultados y discusión Se representará gráficamente la evolución de la producción en el tiempo, así como la evolución de las condiciones ambientales (humedad y temperatura), Se realizará un análisis estadístico de los resultados con un ANOVA de dos factores (luz y temperatura), donde la variable dependiente será la producción total de peso fresco comercial, expresado en gramos. 18 2.5 Cuestiones los tratamientos? - La diferencia de producciones obtenidas entre tratamientos, ¿es estadísticamente significativa? - — ¿Se observan diferencias de humedad entre los grupos? ¿Cómo crees que se podría estandarizar esta variable? 2.6 Bibliografía GARCÍA ROLLÁN, M. (1991). Cultivo de setas y trufas. 22 ed. Mundi-Prensa, Madrid. Prácticas de Fitotecnia ¿Qué equipo sería necesario para poder medir la intensidad lumínica de Anexo 1 Condiciones ambientales Producción Observa- Atmósfera Bala de paja E ciones Fecha | Temp. *C | Hum.-%_| Temp. *C | Hum.-%_|Pesototal | comercial | (1.?, tamaño) TABLA 2.1, Estadillo a rellenar por cada grupo 3. Preparación de ostreatus 3el Introducción E La producción de un ¡8 el cultivo de Pleurotus osti es facilitar la multiplicación siembra de los diferentes setas, La manera más fácil d ¡ en condiciones estériles yi placas Petri), de un fra Posteriormente, las placas] facilitar el crecimiento. Un] la placa, hay que proseguid Es preciso obtener una g sencilla. Por este motiva (granos de cereal, vermid mezcla con el sustrato org 3.2 Objetivos - Desarrollar las té inóculo. - — Determinar la puro de Pleurotudi 20 Prácticas de Fitotecnia 3.3 Metodología 3.3.1 Preparación de inóculo en placas Petri El material necesario para la realización de está práctica es: -Alcohol -Rotuladores de vidrio o etiqueta -Carpóforo de Pleurotus ostreatus -3 placas Petri con medio de crecimiento -Pinzas y bisturi (o cuchilla) -Parafilm -Mechero de alcohol El esquema de realización de la práctica se muestra en la figura 3.1: ud | Siembra de un Fragmento -carpóforo Ed de a Maltiplicación ea Mgliplcaciónes a y cultivo liquido Iwoculación de granos de cereal Obtención de grandes a de micelio graaniado Toijendarión de sustratos industiales FIGURA 3.1. Esquema metodológico para la producción de inócuio miceliar Producción de inóculo mic - — Esterilizar la sup impregnado con a - Cortar la superfiog esterilizados por. dl - — Esterilizar nueva interior del sombs - Introducirlo (con deberá contener 3 Cada 2 ó 3 días, producido por el micelio. «4 hará constar si se han prog crecimiento del micelio se; S (eli 3.3.2 Multiplicación é Los pasos a seguir sor - — Cocer el trigo en fuego lento di se ponerlo a escá evitando que se ra a - — Cuando está escul cálcico (3,5 g de q Prácticas de Fitotecnia Producción de inóculo miceliar 21 , - —Esterilizar la superficie del sombrero de la seta, con un algodón impregnado con alcohol, - — Cortar la superficie del sombrero con una cuchilla o bisturí, previamente esterilizados por flameado en la llama del mechero. práctica es: hol - — Esterilizar nuevamente el bisturí para extraer un fragmento de tejido del ladores de vidrio o etiqueta interior del sombrero de la seta. Im - — Introducirlo (con unas pinzas estériles) en la placa de cultivo. Cada placa deberá contener 3 fragmentos del hongo. - — Sellar la placa con Parafilm y rotularla, - — Incubar las placas según el tratamiento a aplicar: Placa 1: 18 %C y oscuridad ' Placa 2: 25 *C y oscuridad b dibre de vs feagóteñro. Placa 3: Temperatura ambiente y oscuridad . Cada 2 6 3 días, cada grupo deberá revisar sus placas y medir el halo estra en la figura 3.1: producido por el micelio. Multiplicación en . . . A A 16 enisivo líquido Se medirá el diámetro mayor (a) y el diámetro perpendicular (b). También se hará constar si se han producido contaminaciones. Se calculará la superficie de crecimiento del micelio según las siguientes expresiones matemáticas: S (elípticas)= TT ab S (circulares) 41 Y? lación de PO inadi talisanta decereal 3.3.2 Multiplicación de micelio para comercialización Los pasos a seguir son: . - — Cocer el trigo en agua en partes 1:1,5 (1 kg de trigo en 1,5 L de agua), a fuego lento durante 15 minutos, dejándolo reposar 10 minutos y después Pradistilos se ponerlo a escurrir. Remover ligeramente para que se aires, pero producción de inóculo miceliar evitando que se rompan los granos. - — Cuando está escurrido (40-50% de humedad), se mezcla con carbonato cálcico (3,5 g de CaCO» kg de trigo) para disminuir la acidez, y con Sn Prácticas de Fitotecnia i Producción de inóculo miceliar 23 para evitar que los granos de i 3.5 Cuestiones o ! - Ventajas e inconvenientes de utilizar micelio en lugar de esporas en la mete en frascos de vidrio, o multiplicación dolos provisionalmente con - — Además de la temperatura, ¿crees qué hay algún otro factor limitante para . el crecimiento del cultivo? pa obtenido en agar. - ¿Se puede medir el crecimiento del cultivo de otra manera más precisa? - En relación con las técnicas de esterilización: ¿cómo mejorarías las condiciones de asepsia sin contar con la cámara de flujo laminar? - ¿Qué morfología presentan los contaminantes del cultivo? ¿De qué tipo 3 | e o son? ¿Cuál crees que es la fuente de contaminación más probable? ará gráficamente la evolución ra (media y desviación), a lo 3.6 Bibliografía GARCÍA ROLLÁN, M. (1991). Cultivo de setas y trufas. 2.2 ed. Mundi-Prensa. Madrid. HONRUBIA, M., TORRES, P., DÍAZ, G., MORTE, A. (1995). Biotecnología forestal: técnicas de micorrización y micropropagación de plantas. Secretariado de Publicaciones, Universidad de Murcia. HONRUBIA, M., TORRES, P., DÍAZ, G., CANO, A. (1995). Manual para micorrizar plantas en viveros forestales. ICONA-MAPA. Proyecto LUCDEME VIII. Monografías 54. O (dias) . dias) ] y en función de la temperatura. y Prácticas de Fitotecnia 24 Anexo 1 | D (cm) ¡ Fecha _ ¡Colonia 25 13 *C Temp. ambiente. | 1 2 3 | 1 | 2 3 1 2 3 TABLA 3.1. Estadillo a rellenar por cada grupo 4. Cálculo de gr: 4.1 Introducción . A o] Está comprobado q crecimiento y desarrollo 4 incrementa la tempera Esta relación no es line grado, compleja a la hor una buena relación entre 1 desarrollo. 3 Se ilama integral tér de temperatura que ns para distintas especies, 1 considerar constante p: de las condiciones hídri Inicialmente se posteriormente se intr siendo este valor la tez cultivo, la cual depende ¡ el valor de fotoperíodo El guisante para col en el valle del Ebro, ya] parámetros de calidad q grano y el contenido contenido de azúcar di grano alcanza los 1: capacidad de proce: