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Practicas Biotecnologia, Guías, Proyectos, Investigaciones de Biotecnología

Microbiología industrial o biotecnología microbiana es el ámbito de la microbiología orientado a la producción de elementos de interés industrial mediante procesos en los cuales intervenga, en algún paso, un microorganismo.

Tipo: Guías, Proyectos, Investigaciones

2020/2021

Subido el 13/05/2022

fernandosanchezguijarro
fernandosanchezguijarro 🇪🇸

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Prácticas de Biotecnología Microbiana
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Prácticas de
BIOTECNOLOGÍA MICROBIANA
Curso 2020-2021
GRADO EN BIOLOGÍA
Departamento de Biomedicina y Biotecnología
Laboratorio de MICROBIOLOGÍA III, Facultad de Farmacia
Alumno: ………………………………………………………………………………
José Manuel Hernández Ros ([email protected])
Irene Heredero Bermejo ([email protected])
José Manuel Molina ([email protected])
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Prácticas de

BIOTECNOLOGÍA MICROBIANA

Curso 20 20 - 2021

GRADO EN BIOLOGÍA

Departamento de Biomedicina y Biotecnología

Laboratorio de MICROBIOLOGÍA III, Facultad de Farmacia

Alumno: ………………………………………………………………………………

José Manuel Hernández Ros ( [email protected] )

Irene Heredero Bermejo ( [email protected] )

José Manuel Molina ( [email protected] )

Práctica 1

Producción y cuantificación de Penicilina V por distintas cepas de Aspergillus nidulans

Fundamento teórico

La penicilina es un antibiótico producido a nivel industrial por el hongo Penicillium chrysogenum , del cual se han conseguido cepas superproductoras mediante ciclos de mutación-selección, así como por la modificación del medio y de las condiciones de cultivo. No obstante, existen determinadas especies de Aspergillus , como A. nidulans , que también producen penicilinas, aunque aún no se utilizan a nivel comercial. Debido a que su manipulación genética es más sencilla y a un mayor conocimiento de su genoma, estas cepas están siendo utilizadas como modelo para el estudio de la ruta biosintética de las penicilinas, con el objetivo final de mejorar su productividad. Una de las penicilinas producidas en condiciones naturales es la benzil penicilina o penicilina G, que es producida por el hongo sin la adición de precursores y que tiene como cadena lateral el ácido fenilacético. La adición al medio de cultivo de precursores de la cadena lateral, tales como el ácido fenoxiacético, conlleva que durante el proceso de biosíntesis de penicilina se forme la penicilina V (fenoximetilpenicilina), que fue la primera penicilina biosintética obtenida y que es estable a pH ácido. Las penicilinas más utilizadas actualmente son las denominadas semisintéticas, que tienen como estructura básica el ácido 6-aminopenicilánico (6-APA), obtenido a partir de penicilinas naturales o biosintéticas, y al que se unen artificialmente distintas cadenas laterales. Las penicilinas semisintéticas presentan entre otras ventajas clínicas, un mayor espectro de acción, una mejor absorción a través del tubo digestivo y una mayor resistencia a las -lactamasas.

Cepas en estudio

El objetivo de la práctica es estudiar la producción de penicilina V en cuatro cepas de Aspergillus nidulans : R- 21 (cepa silvestre), B- 13 (cepa mutante) y E- 21 (cepa mutante). Distribución de las cepas por mesa de trabajo: Aspergillus nidulans R- 21 Aspergillus nidulans R- 21 Aspergillus nidulans B- 13 Aspergillus nidulans E- 21 Aspergillus nidulans B- 13 Aspergillus nidulans E- 21 Aspergillus nidulans B- 13 Aspergillus nidulans E- 21 Aspergillus nidulans B- 13 Aspergillus nidulans E- 21

Realización del BIOENSAYO

Medio de cultivo ▪ Agar nº 3 Oxoid: 15 g ▪ Caldo de triptona-soja (Sigma): 30 g ▪ Extracto de levadura (Sigma): 1 g ▪ Agua destilada: 1 L .

1. Esterilizar en autoclave y cuando el medio esté a 60 °C aproximadamente añadir la cepa indicadora termófila Geobacillus stearothermophilus. 2. Verter en placa Petri grande. Hacer pocillos en el agar con sacabocados (pipeta Pasteur) e

introducir en cada uno 100 l de cada sobrenadante de cultivo.

*Placas Petri se os entregarán preparadas. Debéis hacer los pocillos para inocular el sobrenadante. VIDEO : realización placas Petri y pocillos (carpeta de prácticas). Además, se realizará como control un bioensayo con concentraciones crecientes de Penicilina V ( 2 .5, 1, 0. 5 , 0. 1 , 0.0 5 y 0.01 mg/ml). *Debéis preparar los patrones de penicilina.

3. Incubar las placas de bioensayo a 55 °C para ver al día siguiente la presencia de halos de inhibición. *Sellar la placa con cinta termorresistente. 4. Medir el tamaño de los halos con una regla. 5. Finalmente, realizar una curva patrón de penicilina V representando en el eje Y el log [penicilina V] en mg/ml y en el eje X, el diámetro en cm del halo de inhibición. Con esta curva patrón se determinará la concentración de penicilina V producida por cada cepa.

Resultados de la curva patrón de Penicilina V.

Concentración de Penicilina V (μg/ml) Ø halo de inhibición (mm) 2 , 5 1 0, 0, 0, 0,

Resultados del bioensayo.

Ø halo de inhibición (mm) Concentración Penicilina V (μg/ml) A. nidulans R- 21 A. nidulans B- 13 A. nidulans E- 21

E- 21

Práctica 3

Detección de actividades bioquímicas en bacterias

Fundamento teórico.

Algunos microorganismos producen enzimas capaces de degradar moléculas complejas tales como polisacáridos, proteínas o lípidos. Estas enzimas son secretadas al medio de cultivo (extracelulares), produciendo la rotura de sus respectivos sustratos vía hidrólisis. Las polisacaridasas (amilasas, celulasas, xilanasas, mananasas…) hidrolizan los polisacáridos a azúcares de menor tamaño; monosacáridos, disacáridos y trisacáridos principalmente. Las proteasas degradan proteínas a pequeños péptidos y aminoácidos. Finalmente, las lipasas hidrolizan lípidos generando glicerol y ácidos grasos. La detección de estas actividades se lleva a cabo fácilmente en medios de cultivo sólidos apropiados que contienen el sustrato de la enzima de interés. El análisis comparativo entre microorganismos productores de una determinada actividad enzimática se realiza de forma visual en el medio utilizado, otras veces, se requiere un rápido revelado de la prueba. Los microorganismos con mayor interés biotecnológico producen elevados niveles de la actividad enzimática.

Desarrollo experimental

Amilasas:

  1. Inocular una placa de agar-almidón cepas de Bacillus subtilis, Pseudomonas aeruginosa y Escherichia coli. Para ello, dividir la placa en tres sectores y dibujar una estría en cada uno de los mismos con la bacteria correspondiente.
  2. Incubar las placas a 37 oC, 24 h.
  3. En el revelado de esta actividad enzimática se emplea “Lugol”. Tras la incubación de los microorganismos, inundar las placas con lugol el cual tiñe al almidón de color oscuro (azul oscuro-negro). Como productos de hidrólisis del almidón por acción de las amilasas, se forman dextrinas, maltosa y glucosa que difunden y no son teñidos por el lugol, por lo que alrededor de la zona de crecimiento se observa un halo transparente. Celulasas, xilanasas y mananasas:
  4. Inocular placas de agar-celulosa, agar-xilano y agar-manano con las siguientes bacterias filamentosas Streptomyces ipomoea , Streptomyces UAH 147 y Streptomyces UAH 127. Dividir cada placa en 3 sectores e inocular la superficie de las mismas dibujando una estría.
  5. Incubar las placas a 28 oC, 48-72 h.
  6. Revelar las placas con lugol como en el caso anterior. Las cepas productoras de celulasas, xilanasas y mananasas presentan un halo transparente alrededor de las colonias formadas. Nota: echar el Lugol de forma rápida para que el revelado sea homogéneo. Proteasas:
  7. Inocular una placa de agar-gelatina con las bacterias: B. subtilis. E. coli y Enterococcus faecalis. Dividir dicha placa en tres sectores y dibujar una estría en cada uno de los mismos con la bacteria correspondiente.
  8. Incubar las placas a 37 oC, 24 h.
  9. Para revelar dicha actividad enzimática, inundar las placas con el reactivo de Frazier y observar los halos de aclaramiento alrededor de las zonas de crecimiento de las bacterias. Lipasas:
  10. Inocular una placa de agar “Spirit Blue” con las bacterias: P. aeruginosa, Staphylococcus aureus y B. subtilis. Dividir la placa en tres sectores y dibujar una estría en cada uno de los mismos con la bacteria correspondiente.
  11. Incubar las placas a 37 oC, 24 h.
  12. La producción de lipasas confiere un color azul intenso al medio. A mayor intensidad de color azul, mayor producción de estas enzimas.

Práctica 4

Obtención de vinagre de bebidas alcohólicas fermentadas (cerveza). Observar bacterias acéticas y levaduras de la flor del vinagre.

Introducción

El vinagre es un producto resultante de la conversión del etanol de bebidas alcohólicas fermentadas (vino, cerveza, sidra, sake…) en ácido acético por acción de bacterias acéticas, entre las que destacan los géneros Acetobacter y Gluconobacter. Las bacterias acéticas cultivadas en medio agar-etanol-carbonato cálcico forman colonias blancas rodeadas de un halo transparente como consecuencia de la disolución del carbonato cálcico por el ácido acético que producen.

Elaboración de vinagre de cerveza

La cerveza es una bebida que se considera con baja carga de microrganismos debido a que se pasteuriza antes de comercializarse. Para elaborar un vinagre de cerveza se vierte el contenido de una botella en un matraz de 2 l. A continuación, se inocula un cultivo puro o mixto de bacterias acéticas manteniendo el matraz abierto a temperatura ambiente (25 oC aproximadamente). Tras 1- 2 semanas de incubación las bacterias acéticas forman la flor del vinagre, indicativo del comienzo de la acetificación de la cerveza.

Desarrollo experimental

  1. Determinar los siguientes parámetros en el vinagre de cerveza comparándolos cerveza control: olor y pH.
  2. Tomar una muestra de la flor del vinagre y hacer una tinción de Gram para observar las bacterias acéticas. Además, es frecuente poder observar en la muestra de vinagre distintas levaduras e incluso otras bacterias.
  3. Inocular una muestra de la flor del vinagre en una placa de agar-etanol-carbonato cálcico y otra placa de medio YEM. Utilizar la técnica de siembra por agotamiento. Incubar las placas a 25 oC durante 2 - 3 d. Observar macroscópicamente y microscópicamente, mediante la tinción de Gram, las colonias obtenidas.

Procedimiento de la tinción de Gram:

  1. Realizar un frotis de la muestra extendiendo una porción del cultivo en porta con una gota de agua.
  2. Fijar a la llama del mechero.
  3. Cubrir la preparación con el colorante primario cristal violeta y mantener durante 2 minutos.
  4. Aplicar el agente mordiente lugol durante 1 minuto. Este compuesto refuerza la acción del cristal violeta.
  5. Decolorar con alcohol de 96º: añadir alcohol a la preparación 3 veces consecutivas, dejándolo actuar durante 15 - 30 segundos cada vez antes de escurrirlo. Lavar con agua tras la última aplicación de alcohol.
  6. Aplicar el colorante secundario o de contraste safranina durante 1 minuto.
  7. Lavar con agua, secar al aire y observar al microscopio.