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Preguntas varias micro, Apuntes de Microbiología

Preguntas variadas de microbiologia I

Tipo: Apuntes

2020/2021

Subido el 27/12/2021

patricia-camila-fuentes-vald-s
patricia-camila-fuentes-vald-s 🇨🇱

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Laboratorio Semana 1
1.- ¿Cul es el fundamento y procedimiento para realizar la tincin de gram? ¿Qu rol cumple cada reactivo
en sta?
El fundamento de la tinción de gram se basa en la estructura de la pared celular bacteriana, ya que;
- La pared celular de las bacterias gram + poseen una gruesa
capa de peptidoglican, por lo que, son capaces de retener el
colorante violeta de genciana y no son decoloradas por el alcohol
acetona quedando de un color morado.
- La pared celular de las bacterias gram poseen una delgada
capa de peptidoglican unida a una segunda membrana plasmática
externa por medio de lipoproteínas, por lo que, no retienen el
violeta de genciana y son decoloradas por el alcohol acetona. Se le
añade safranina como colorante de contraste adquiriendo el color
rosa.
Procedimiento y rol de cada reactivo:
1.- Se utiliza el colorante básico o primario el violeta de genciana. (1 min)
2.- Se añade el lugol que actúa como mordente en esta tinción por el iodo, fijando el cristal de violeta y formando
complejos de cristal violeta-iodo en ambos tipos bacterianos. (1 min)
3.- Decoloración con alcohol acetona (paso más importante de la tinción), donde las bacterias que son gram
positivas al poseer gran cantidad de peptidoglican en su pared, van a retener estos complejos de cristal violeta
producto de la deshidratación de la pared que causa el alcohol (los complejos no pueden salir), y las bacterias que
son gram negativas van a perder estos complejos de cristal violeta lugol. (5 segundos)
4.- Se añade la safranina como colorante de contraste, por lo que, las bacterias gram negativas que estaban
decoloradas, captan la safranina y las gram positivas como ya están teñidas con estos complejos de cristal violeta
lugol, se van a mantener de color violeta. (30 segundos)
2.- ¿Qu aspectos se deben consignar para realizar la caracterizacin macroscpica de una cepa bacteriana?
Se deben considerar aspectos como:
- Tamaño (pequeñas, medianas o grandes).
- Forma.
- Color.
- Bordes (regulares e irregulares).
- Aspecto (Cremoso, húmedo, brillantes,etc).
- Hemólisis (Alfa, Beta o Gamma hemólisis).
3.- Realiza un cuadro descriptivo con los aspectos descritos en la pregunta anterior y compltalo para
enterobacterias, Staphylococcus spp. Streptococcus spp., Enterococcus spp., y Pseudomonas spp.
Microorganismo Características macroscópicas Imagen
Staphylococcus
aureus
Cocáceas gram(+)
en racimo
Colonias pequeñas a medianas, color
dorado o blanquecino-grisáceas, de forma
circular y bordes redondeados. Presentan
aspecto cremoso y beta hemólisis.
*(No siempre presentan color dorado
otorgado por pigmento staphylosantina)
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Laboratorio Semana 1 1.- ¿Cuál es el fundamento y procedimiento para realizar la tinción de gram? ¿Qué rol cumple cada reactivo en é sta? El fundamento de la tinción de gram se basa en la estructura de la pared celular bacteriana, ya que;

  • La pared celular de las bacterias gram + poseen una gruesa capa de peptidoglican , por lo que, son capaces de retener el colorante violeta de genciana y no son decoloradas por el alcohol acetona quedando de un color morado.
  • La pared celular de las bacterias gram – poseen una delgada capa de peptidoglican unida a una segunda membrana plasmática externa por medio de lipoproteínas, por lo que, no retienen el violeta de genciana y son decoloradas por el alcohol acetona. Se le añade safranina como colorante de contraste adquiriendo el color rosa. Procedimiento y rol de cada reactivo: 1.- Se utiliza el colorante básico o primario el violeta de genciana. (1 min) 2.- Se añade el lugol que actúa como mordente en esta tinción por el iodo, fijando el cristal de violeta y formando complejos de cristal violeta-iodo en ambos tipos bacterianos. (1 min) 3.- Decoloración con alcohol acetona (paso más importante de la tinción), donde las bacterias que son gram positivas al poseer gran cantidad de peptidoglican en su pared, van a retener estos complejos de cristal violeta producto de la deshidratación de la pared que causa el alcohol (los complejos no pueden salir), y las bacterias que son gram negativas van a perder estos complejos de cristal violeta lugol. (5 segundos) 4.- Se añade la safranina como colorante de contraste, por lo que, las bacterias gram negativas que estaban decoloradas, captan la safranina y las gram positivas como ya están teñidas con estos complejos de cristal violeta lugol, se van a mantener de color violeta. (30 segundos) 2.- ¿Qué aspectos se deben consignar para realizar la caracterización macroscópica de una cepa bacteriana? Se deben considerar aspectos como:
  • Tamaño (pequeñas, medianas o grandes).
  • Forma.
  • Color.
  • Bordes (regulares e irregulares).
  • Aspecto (Cremoso, húmedo, brillantes,etc).
  • Hemólisis (Alfa, Beta o Gamma hemólisis). 3.- Realiza un cuadro descriptivo con los aspectos descritos en la pregunta anterior y complétalo para enterobacterias, Staphylococcus spp. Streptococcus spp., Enterococcus spp., y Pseudomonas spp. Microorganismo Características macroscópicas Imagen Staphylococcus aureus Cocáceas gram(+) en racimo Colonias pequeñas a medianas, color dorado o blanquecino-grisáceas, de forma circular y bordes redondeados. Presentan aspecto cremoso y beta hemólisis. *(No siempre presentan color dorado otorgado por pigmento staphylosantina)

Staphylococcus epidermidis Cocáceas gram(+) en racimo Colonias pequeñas a medianas, blanquecinas de forma circular y bordes redondeados. Presentan aspecto cremoso y pueden presentar hemólisis o no, pero SIEMPRE beta. Staphylococcus saprophyticus Cocáceas gram(+) en racimo Colonias pequeñas a medianas, blanquecinas de forma circular y bordes redondeados. Presentan aspecto cremoso y pueden presentar hemólisis o no, pero SIEMPRE beta. Streptococcus agalactiae Cocáceas gram (+) en cadenas largas Colonias pequeñas a medianas, brillantes, de color blanquecino grisáceas, de forma circular y bordes redondeados. Presentan aspecto húmedo y discreta beta hemólisis. Streptococcus pyogenes Cocáceas gram (+) en cadenas largas Colonias pequeñas a medianas, brillantes, de color blanquecino grisáceas, de forma circular y bordes redondeados. Presentan aspecto cremoso y gran beta hemólisis. Streptococcus pneumoniae Diplococos gram (+) Pueden ser capsulados o no Colonias medianas, de color grisáceas, de forma circular y aspecto umbilicado. Presentan un aspecto mucoso (capsuladas sobre todo) y alfa hemólisis.

Laboratorio Semana 2 Cuestionario de autoestudio para preparación del práctico:

1. Describe el procedimiento para realizar un antibiograma. a) Se debe tener la cepa pura en un agar cualquiera (Puede ser agar sangre, MCCK, Chocolate, etc.). b) Se sacan con un asa a partir del agar y se depositan las bacterias en un medio líquido con una siembra por emulsión. c) Llevar la siembra por emulsión a un estándar de turbidez (0,5 McFarland con el objetivo de obtener una concentración bacteriana equivalente a 1,5 por 10^8 (UFC/ml) d) Una vez obtenido el estándar de turbidez, se toma una tórula seca y estéril, se sumerge en el caldo y se depositan las bacterias en una placa para realizar una siembra por tapiz. e) La siembra en tapiz se realiza en 3 direcciones (se va dando vuelta la placa y se siembra). Acá lo importante es que la siembra sea hacia arriba y hacia abajo y hacia los lados (por ello se va dando vuelta la placa) con el objetivo de tener un crecimiento parejo de la cepa f) Posteriormente se colocan discos o tiras de antibióticos. g) Se incuba durante 18-24 hrs a 35ºC. h) Se leen los halos de inhibición o la CIM según la CLSI. 2. ¿Qué características tiene el Agar Muller Hinton?

  • Permite adicionar ciertos nutrientes, dependiendo de la especie que nosotros vamos a utilizar, como por ej., bacterias como S. pneumoniae no crece en agar MH, por lo que se le debe añadir sangre de cordero al 5%.
  • No presenta inhibidores.
  • Capacidad de tampón adecuada.
  • No posee o posee baja concentración de timidina.
  • Concentraciones distintas de cationes: Ca2+ 25 ug/ml y Mg+ 12.5 ug/ml.
  • pH adecuado dependiendo del medio.
  • Profundidad del agar: 4 más menos 0,5 mm.
  • Humedad adecuada. 3. ¿Cuál es el fundamento técnico de las pruebas de identificaci ón rápidas? Catalasa: Se basa en evidenciar la presencia de la enzima catalasa. Se utilizan 2 gotas de H2O1, a las cuales se le agregan colonias de la bacteria en estudio. Si presenta la enzima catalasa, habrá aparición de burbujas. Oxidasa: Se evidencia la presencia de enzimas oxido-reductasas que utilizan como último aceptor de electrones el oxígeno. En este caso, se mide la presencia de Citocromo C-oxidasa (complejo entre citocromo tipo C y enz oxidasa). Se utiliza el sustrato “Kovacs”, y si la reacción es positiva, se obtiene un compuesto coloreado azul-morado

RECORDAR:

* Sacar colonia a partir

de agares sin inhibidores.

* Leer a 30s

* Utilizar asas curvas

4. Realiza un cuadro comparativo con las pruebas de identificación a utilizar para los distintos géneros bacterianos: Staphylococcus spp. Streptococcus spp., Enterococcus spp., y Listeria spp., Bacillus spp, Erysipelothrix rhusiopathiae. 5. Realiza un listado de los antibióticos a utilizar para el antibiograma de Staphylococcus spp.  Clindamicina  Eritromicina  Cefoxitín  Gentamicina  Rifampicina  Ciprofloxacino  Cloranfenicol  Sulfametoxazol – Trimetoprim *Foco urinario: Nitrofurantoína, Tetraciclinas.

_Haemophilus spp_*  Se utiliza agar HTM ( Haemophilus Test Medium). Agar base GC USO: La Base de Agar Gelosa Chocolate es un medio utilizado con varios suplementos para el aislamiento y cultivo de Neisseria gonorrhoeae y otros microorganismos fastidiosos. Este medio también es conocido como Base de Agar GC. EXPLICACIÓN: La Base de Agar GC es utilizada para preparar placas de Agar Gelosa Chocolate cuando es suplementada con hemoglobina al 1% que provee la hemina (Factor X) requerida para el crecimiento de Haemophilus y mejorar el desarrollo de Neisseria , así como suplementos enriquecidos (disponibles comercialmente) que proveen dinucleótido de nicotinamida y adenina (NAD), coenzimas, vitaminas, aminoácidos, dextrosa y otros factores de crecimiento, todos ellos necesarios para el mejor desarrollo de Haemophilus y Neisseria. Cuando a esta base se le adiciona además de la hemoglobina y suplementos enriquecidos, inhibidores selectivos como el VCN o VCNT se prepara el Agar Thayer Martín y Agar Thayer Martín Modificado. En el medio;

  • Las mezclas de peptonas proveen el nitrógeno, las vitaminas, el carbono y los aminoácidos esenciales para el crecimiento.
  • El almidón es agregado para absorber cualquier metabolito tóxico producido.
  • Los fosfatos actúan como sistema buffer.
  • El cloruro de sodio mantiene el balance osmótico.
  1. Realiza un cuadro comparativo o algoritmo de identificación con las pruebas de identificación a utilizar para los distintos géneros bacterianos. Streptococcus spp., Enterococcus spp, Haemophilus spp., Neisseria spp.

Enterococcus spp  Presentan fenotipo Van que se detecta por CIM (Concentración mínima inhibitoria) mediante el uso de Vancomicina y Teicoplanina.

- Van A (Transferible): Vancomicina R y Teicoplanina R. - Van B (Transferible): Vancomicina R (Intermedia o alta) y Teicoplanina S. - Van C (Cromosomal): Vancomicina R (Baja) y Teicoplanina S. - Otros Van. Laboratorio Semana 5

  1. ¿Cuál es fundamento técnico y utilidad de cada medio de la batería bioquímica?
  2. ¿Qué enterobacterias son lactosa positiva? Escherichia coli (95 %), Citrobacter spp, Klebsiella spp (98%) y Enterobacter spp.
  3. ¿Qué enterobacterias son lactosa negativa? Proteus spp, Morganella spp, Providencia spp, Serratia spp, Shigella spp, Salmonella spp, Yersinia enterocolítica.
  4. ¿Qué enterobacterias producen H 2 S? Algunas especies de Proteus, Citrobacter y Salmonella.

Laboratorio Semana 6

1. ¿Cuál es fundamento técnico del O/F y MN?O/F: El fundamento técnico se basa en determinar si la utilización de los hidratos de carbono por parte de un MO se realiza por vía oxidativa o por vía fermentativa. Esto se realiza con una siembra en dos medios iguales, pero a uno le tapamos el ingreso de O2 con vaselina líquida, entonces tendremos el tubo oxidativo (Tubo O) y el tubo fermentativo (Tubo F) O/F: A/N  Oxidación del carbohidrato. O/F: A/A  Siembra de una Enterobacteria. O/F: N/A  Fermentación del carbohidrato (¿Enterobacteria?) O/F: K/N  Significa que NO oxidó, y también este medio posee peptonas, por lo que, en vez de utilizar el carbohidrato y acidificar el medio, utilizó peptonas y lo alcalinizó. Eso significa que NO utiliza el carbohidrato. _Consideraciones:_* - Conservar medio en oscuridad 2-8ºC. - Incubar 35ºC en aerobiosis hasta 48h. - No descartar como negativo hasta los 4 días de incubación  MN: Medio semisólido que permite ver movilidad (presenciada por turbidez del medio) y determinar la capacidad del organismo de reducir el nitrato en nitritos a través de la producción de nitrato o nitrito reductasa. 1.- Se siembra el tubo en picada 3⁄4 en ambiente de esterilidad. 2.- Incubar el tubo 24 horas en una estufa a 35ºC. 3.- Tomar el tubo y ver movilidad. 4.- Luego, se adicionan reactivos A y B, dos gotas de cada uno que van a marcar la presencia de nitritos. **Reactivo A: Ac sulfanílico Reactivo B: Alfa- naftilamina

  • Si hay nitritos se colocará rojo.
  • Si el tubo no se colocó rojo significan dos opciones:
  • Que la bacteria no utilizó los nitratos y están ahí.
  • Que la bacteria utilizó nitratos y los redujo a gas nitrato, y en ese caso, NO hay nitratos, ni nitritos, sino que se fue todo en forma de gas (N). 5.- ¿Cómo generar la diferencia?

Antibióticos Enterobacterias ABG 1º línea: Pencilina o amoxicilina. Cefazolina Cefuroxima Ciprofloxacino Nitrofurantoína Sulfametoxazol – Trimetoprim. Gentamicina ABG 2º línea: Cefalosporina 3º: Ceftriaxona, Ceftazidima, Cefotaxima. Cefepime Ertapenem Meropenem Imipenem Piperacilina – Tazobactam Ampicilina – Sulbactam Amikacina _Antibi óticos dependerá n de resistencias intrínsecas que posean las distintas especies de Enterobacterales, pero este es el esquema antibió tico._* Pseudomonas aeruginosa Ciprofloxacino o Levofloxacino. Gentamicina Ceftazidima Cefepime Meropenem Imipenem Piperacilina – Tazobactam Amikacina Acinetobacter baumannii Ciprofloxacino Sulfametoxazol – Trimetoprim. Gentamicina Meropenem Imipenem Piperacilina – Tazobactam Ampicilina – Sulbactam Cefoperazona-Sulbactam Amikacina Burkholderia cepacia complex Sulfametoxazol – Trimetoprim. Ceftazidima Meropenem Stenotrophomonas maltophilia Sulfametoxazol – Trimetoprim. Ceftazidima. Cefepime. Ticarciclina – Ácido clavulánico. Moxifloxacino

RECORDAR IR de BNF RECORDAR IR DE Enterobacterales