









Prepara tus exámenes y mejora tus resultados gracias a la gran cantidad de recursos disponibles en Docsity
Gana puntos ayudando a otros estudiantes o consíguelos activando un Plan Premium
Prepara tus exámenes
Prepara tus exámenes y mejora tus resultados gracias a la gran cantidad de recursos disponibles en Docsity
Prepara tus exámenes con los documentos que comparten otros estudiantes como tú en Docsity
Encuentra los documentos específicos para los exámenes de tu universidad
Estudia con lecciones y exámenes resueltos basados en los programas académicos de las mejores universidades
Responde a preguntas de exámenes reales y pon a prueba tu preparación
Consigue puntos base para descargar
Gana puntos ayudando a otros estudiantes o consíguelos activando un Plan Premium
Comunidad
Pide ayuda a la comunidad y resuelve tus dudas de estudio
Ebooks gratuitos
Descarga nuestras guías gratuitas sobre técnicas de estudio, métodos para controlar la ansiedad y consejos para la tesis preparadas por los tutores de Docsity
Preguntas variadas de microbiologia I
Tipo: Apuntes
1 / 15
Esta página no es visible en la vista previa
¡No te pierdas las partes importantes!










Laboratorio Semana 1 1.- ¿Cuál es el fundamento y procedimiento para realizar la tinción de gram? ¿Qué rol cumple cada reactivo en é sta? El fundamento de la tinción de gram se basa en la estructura de la pared celular bacteriana, ya que;
Staphylococcus epidermidis Cocáceas gram(+) en racimo Colonias pequeñas a medianas, blanquecinas de forma circular y bordes redondeados. Presentan aspecto cremoso y pueden presentar hemólisis o no, pero SIEMPRE beta. Staphylococcus saprophyticus Cocáceas gram(+) en racimo Colonias pequeñas a medianas, blanquecinas de forma circular y bordes redondeados. Presentan aspecto cremoso y pueden presentar hemólisis o no, pero SIEMPRE beta. Streptococcus agalactiae Cocáceas gram (+) en cadenas largas Colonias pequeñas a medianas, brillantes, de color blanquecino grisáceas, de forma circular y bordes redondeados. Presentan aspecto húmedo y discreta beta hemólisis. Streptococcus pyogenes Cocáceas gram (+) en cadenas largas Colonias pequeñas a medianas, brillantes, de color blanquecino grisáceas, de forma circular y bordes redondeados. Presentan aspecto cremoso y gran beta hemólisis. Streptococcus pneumoniae Diplococos gram (+) Pueden ser capsulados o no Colonias medianas, de color grisáceas, de forma circular y aspecto umbilicado. Presentan un aspecto mucoso (capsuladas sobre todo) y alfa hemólisis.
Laboratorio Semana 2 Cuestionario de autoestudio para preparación del práctico:
1. Describe el procedimiento para realizar un antibiograma. a) Se debe tener la cepa pura en un agar cualquiera (Puede ser agar sangre, MCCK, Chocolate, etc.). b) Se sacan con un asa a partir del agar y se depositan las bacterias en un medio líquido con una siembra por emulsión. c) Llevar la siembra por emulsión a un estándar de turbidez (0,5 McFarland con el objetivo de obtener una concentración bacteriana equivalente a 1,5 por 10^8 (UFC/ml) d) Una vez obtenido el estándar de turbidez, se toma una tórula seca y estéril, se sumerge en el caldo y se depositan las bacterias en una placa para realizar una siembra por tapiz. e) La siembra en tapiz se realiza en 3 direcciones (se va dando vuelta la placa y se siembra). Acá lo importante es que la siembra sea hacia arriba y hacia abajo y hacia los lados (por ello se va dando vuelta la placa) con el objetivo de tener un crecimiento parejo de la cepa f) Posteriormente se colocan discos o tiras de antibióticos. g) Se incuba durante 18-24 hrs a 35ºC. h) Se leen los halos de inhibición o la CIM según la CLSI. 2. ¿Qué características tiene el Agar Muller Hinton?
4. Realiza un cuadro comparativo con las pruebas de identificación a utilizar para los distintos géneros bacterianos: Staphylococcus spp. Streptococcus spp., Enterococcus spp., y Listeria spp., Bacillus spp, Erysipelothrix rhusiopathiae. 5. Realiza un listado de los antibióticos a utilizar para el antibiograma de Staphylococcus spp. Clindamicina Eritromicina Cefoxitín Gentamicina Rifampicina Ciprofloxacino Cloranfenicol Sulfametoxazol – Trimetoprim *Foco urinario: Nitrofurantoína, Tetraciclinas.
_Haemophilus spp_* Se utiliza agar HTM ( Haemophilus Test Medium). Agar base GC USO: La Base de Agar Gelosa Chocolate es un medio utilizado con varios suplementos para el aislamiento y cultivo de Neisseria gonorrhoeae y otros microorganismos fastidiosos. Este medio también es conocido como Base de Agar GC. EXPLICACIÓN: La Base de Agar GC es utilizada para preparar placas de Agar Gelosa Chocolate cuando es suplementada con hemoglobina al 1% que provee la hemina (Factor X) requerida para el crecimiento de Haemophilus y mejorar el desarrollo de Neisseria , así como suplementos enriquecidos (disponibles comercialmente) que proveen dinucleótido de nicotinamida y adenina (NAD), coenzimas, vitaminas, aminoácidos, dextrosa y otros factores de crecimiento, todos ellos necesarios para el mejor desarrollo de Haemophilus y Neisseria. Cuando a esta base se le adiciona además de la hemoglobina y suplementos enriquecidos, inhibidores selectivos como el VCN o VCNT se prepara el Agar Thayer Martín y Agar Thayer Martín Modificado. En el medio;
Enterococcus spp Presentan fenotipo Van que se detecta por CIM (Concentración mínima inhibitoria) mediante el uso de Vancomicina y Teicoplanina.
- Van A (Transferible): Vancomicina R y Teicoplanina R. - Van B (Transferible): Vancomicina R (Intermedia o alta) y Teicoplanina S. - Van C (Cromosomal): Vancomicina R (Baja) y Teicoplanina S. - Otros Van. Laboratorio Semana 5
Laboratorio Semana 6
1. ¿Cuál es fundamento técnico del O/F y MN? O/F: El fundamento técnico se basa en determinar si la utilización de los hidratos de carbono por parte de un MO se realiza por vía oxidativa o por vía fermentativa. Esto se realiza con una siembra en dos medios iguales, pero a uno le tapamos el ingreso de O2 con vaselina líquida, entonces tendremos el tubo oxidativo (Tubo O) y el tubo fermentativo (Tubo F) O/F: A/N Oxidación del carbohidrato. O/F: A/A Siembra de una Enterobacteria. O/F: N/A Fermentación del carbohidrato (¿Enterobacteria?) O/F: K/N Significa que NO oxidó, y también este medio posee peptonas, por lo que, en vez de utilizar el carbohidrato y acidificar el medio, utilizó peptonas y lo alcalinizó. Eso significa que NO utiliza el carbohidrato. _Consideraciones:_* - Conservar medio en oscuridad 2-8ºC. - Incubar 35ºC en aerobiosis hasta 48h. - No descartar como negativo hasta los 4 días de incubación MN: Medio semisólido que permite ver movilidad (presenciada por turbidez del medio) y determinar la capacidad del organismo de reducir el nitrato en nitritos a través de la producción de nitrato o nitrito reductasa. 1.- Se siembra el tubo en picada 3⁄4 en ambiente de esterilidad. 2.- Incubar el tubo 24 horas en una estufa a 35ºC. 3.- Tomar el tubo y ver movilidad. 4.- Luego, se adicionan reactivos A y B, dos gotas de cada uno que van a marcar la presencia de nitritos. **Reactivo A: Ac sulfanílico Reactivo B: Alfa- naftilamina
Antibióticos Enterobacterias ABG 1º línea: Pencilina o amoxicilina. Cefazolina Cefuroxima Ciprofloxacino Nitrofurantoína Sulfametoxazol – Trimetoprim. Gentamicina ABG 2º línea: Cefalosporina 3º: Ceftriaxona, Ceftazidima, Cefotaxima. Cefepime Ertapenem Meropenem Imipenem Piperacilina – Tazobactam Ampicilina – Sulbactam Amikacina _Antibi óticos dependerá n de resistencias intrínsecas que posean las distintas especies de Enterobacterales, pero este es el esquema antibió tico._* Pseudomonas aeruginosa Ciprofloxacino o Levofloxacino. Gentamicina Ceftazidima Cefepime Meropenem Imipenem Piperacilina – Tazobactam Amikacina Acinetobacter baumannii Ciprofloxacino Sulfametoxazol – Trimetoprim. Gentamicina Meropenem Imipenem Piperacilina – Tazobactam Ampicilina – Sulbactam Cefoperazona-Sulbactam Amikacina Burkholderia cepacia complex Sulfametoxazol – Trimetoprim. Ceftazidima Meropenem Stenotrophomonas maltophilia Sulfametoxazol – Trimetoprim. Ceftazidima. Cefepime. Ticarciclina – Ácido clavulánico. Moxifloxacino
RECORDAR IR de BNF RECORDAR IR DE Enterobacterales