Fu il primo ormone vegetale studiato nelle piante. Il segnale dell’auxina è stato trovato in ogni
aspetto della crescita e dello sviluppo delle piante. Sia le auxine che le citochinine sono necessarie
per la vitalità dell’embrione vegetale e a differenza degli altri ormoni sono richieste
continuativamente.
Alla fine del diciannovesimo secolo, Darwin e figlio incominciarono a studiare il ripiegamento della
pianta verso la luce (fototropismo). In alcuni esperimenti usarono piantine di scagliola le cui foglie
giovani sono incapsulate in una membrana chiamata coleottile; il coleottile e le pianticelle giovani
sono estremamente sensibili alla luce: se vengono illuminati da una sola parte, essi si piegano
verso la sorgente luminosa. I Darwin scoprirono che era la punta del coleottile che percepiva la
luce, poiché se essi coprivano la punta con un foglio (oppure la tagliavano) il coleottile non si
piegava. Ma la regione del coleottile responsabile del ripiegamento, definita zona di allungamento,
si trova sotto l’apice: si concluse che un certo stimolo di crescita era prodotto nell’apice , da qui
raggiungeva la zona di crescita e faceva si che la parte in ombra crescesse più velocemente.
Nel 1926, Went, dimostrò che la sostanza attiva che promuove la crescita può diffondere in un
blocchetto di gelatina. Tale blocchetto veniva poi posta da una parte o dall’altra dell’apice di un
coleottile reciso, e si poteva valutare la capacità della gelatina di indurre il ripiegamento in assenza
di luce unilaterale. Poiché la sostanza provocava l’allungamento di sezioni di coleottile, le si dette il
nome di auxina (auxein = crescere).
Nella metà degli anni '30 si isolò l'auxina: è l'acido 3-indolacetico (IAA). Successivamente furono
scoperte molte altre auxine nelle piante superiori, ma l'IAA è di gran lunga la più abbondante; tra
le altre auxine naturali troviamo l'acido 4-cloroindol-3-acetico nella pianta di pisello e l'acido indol-
3-butirrico nella senape e il mais.
Studio dei livelli di Auxina: Vi sono alcuni metodi che sono stati storicamente utilizzati per stimare
il contenuto di auxina di un determinato tessuto, come ad esempio la misurazione dell'angolo di
curvatura di un coleottile decapitato su cui veniva applicato un blocchetto di gelatina tratto dalla
purificazione del tessuto da analizzare, per capire quanta auxina relativa contenesse. Attualmente
si utilizzano dosaggi radioimmunologici che, mediante la somministrazione di anticorpi per l'auxina
(legata a una proteina specifica) marcati, permettono la misurazione quantitativa dell'auxina
presente in un tessuto. Un metodo ancora più preciso è mediante lo spettrometro di massa
(cromatografia ad alta pressione). Un'altra tecnica per osservare in vivo l'auxina è quella del gene
reporter: la pianta viene trasformata con un gene codificante per la beta-glucoronidasi, un enzima
che idrolizza un opportuno substrato rilasciando un colorante blu; questo gene è sotto il controllo
di un promotore preso da un gene che è sotto il controllo dell'auxina: in una pianta trasformata
con questo gene, il colorante compare dove ci sono i geni espressi sotto il controllo dell'ormone.
BIOSINTESI: è ospitata dai tessuti in rapida divisione e accrescimento, in particolar modo nei
meristemi apicali dei germogli e nelle giovani foglie. Il precursore dell'auxina è il triptofano, per
tanto la sua biosintesi è una diramazione della via biosintetica dell'amminoacido. Le tre principali
vie metaboliche vegetali e la via batterica per la biosintesi di IAA dipendente dal triptofano sono la
via TAM, la via IPA e la via IAN.
1) La via della triptammina (TAM) inizia con la decarbossilazione del triptofano per formare TAM.
Una serie di reazioni enzimatiche converte quindi la triptammina in indol-3-acetaldeide (IAAld),
