



Prepara tus exámenes y mejora tus resultados gracias a la gran cantidad de recursos disponibles en Docsity
Gana puntos ayudando a otros estudiantes o consíguelos activando un Plan Premium
Prepara tus exámenes
Prepara tus exámenes y mejora tus resultados gracias a la gran cantidad de recursos disponibles en Docsity
Prepara tus exámenes con los documentos que comparten otros estudiantes como tú en Docsity
Encuentra los documentos específicos para los exámenes de tu universidad
Estudia con lecciones y exámenes resueltos basados en los programas académicos de las mejores universidades
Responde a preguntas de exámenes reales y pon a prueba tu preparación
Consigue puntos base para descargar
Gana puntos ayudando a otros estudiantes o consíguelos activando un Plan Premium
Comunidad
Pide ayuda a la comunidad y resuelve tus dudas de estudio
Ebooks gratuitos
Descarga nuestras guías gratuitas sobre técnicas de estudio, métodos para controlar la ansiedad y consejos para la tesis preparadas por los tutores de Docsity
preguntas de examen, orientado al estudio de enzimas en bioreactores
Tipo: Apuntes
1 / 6
Esta página no es visible en la vista previa
¡No te pierdas las partes importantes!




Temario: Bases de la catálisis enzimática. Estado de transición. Unión sustrato-sitio activo (grupos de unión al sustrato, grupos catalíticos). Tipos de mecanismos de reacción. Catálisis ácido-base. Efecto del pH. Cinética de las reacciones catalizadas por enzimas. Velocidad inicial. Métodos de medidas experimentales. Dependencia de la velocidad de reacción con la concentración de enzima y de sustrato. Número de recambio. Ecuación de Michaelis-- Menten. Supuestos fundamentales. Significado físico de los distintos parámetros. Unidades de actividad enzimática. Determinación de parámetros de reacciones enzimáticas monosustrato. Representaciones gráficas alternativas (transformaciones de la ecuación de MichaelisMenten).
Bibliografía: Bioquímica. Lehninger Bioquímica. Stryer. Bioquímica. Zubay Cálculos en Bioquímica. Segel Enzimas. Dixon Quantitative problems in Biochemistry. Dawes.
1- ¿Cuáles son los aspectos característicos de las reacciones enzimáticas? 2- ¿Es cierto que todas las enzimas conocidas son de naturaleza proteica? 3- ¿Qué propiedades presentan las enzimas que las diferencian de otros catalizadores? 4- ¿Qué tipo de interacciones se ejercen entre la enzima y el sustrato para formar el complejo ES? 5- ¿A qué es igual la constante de Michaelis, de qué depende? 6- Defina Ks y kcat. 7- ¿Cuál es la diferencia entre el complejo activado y el complejo enzimasustrato? 8- Para una reacción A B defina las condiciones en que Km=Ks. Describa condiciones bajo las cuales esto no es cierto. 9- ¿Cuál es la aproximación del estado estacionario y bajo que condiciones es válida? 10- ¿Cuál es el orden de reacción, con respecto al sustrato, de una reacción enzimática monosustrato? 11- ¿Bajo qué condiciones podemos asegurar que medimos velocidades iniciales? 12- ¿Cómo varía la velocidad inicial para [S]<<Km y para [S]>>Km? ¿Qué utilidad tiene trabajar en cada una de estas condiciones? 13- ¿Cuál estimaría que fuese la concentración del sustrato fisiológica de las enzimas? Justifique. 14- ¿Qué es el número de recambio
Problema 1. La creatina quinasa cataliza la siguiente reacción:
creatina + ATP CreatinaP + ADP Km (creatina) : 1,6 x 10
2 M Mg++
a) De acuerdo al valor de la constante de equilibrio de la reacción, a pH 8,0 un 87% de la creatina se encuentra como creatina-P. Si a la mezcla de esta reacción se le agrega la enzima (sin cambiar las otras condiciones), ¿podría predecir qué porcentaje de creatina fosforilada habrá cuando se alcance el equilibrio?
b) Si luego de alcanzado el equilibrio se agrega creatina-P marcada con 32 P, ¿Se introducirá (^32) P en el ATP?
c) ¿Qué significado físico tiene Km? ¿Como podría aumentar la Km(creatina)?
Problema 2. Relación entre la concentración de sustrato (S), Km, velocidad inicial y Vmáx:
a) Calcule los valores de (S) en relación a Km para los cuales se obtienen velocidades iniciales de reacción de 5%, 10%, 25%, 50%, 90% y 99% de la Vmax, y grafique los resultados (reordene apropiadamente la ecuación de Michaelis-Menten). ¿Qué rango de (S) es el más útil para determinar el valor de Km? b) ¿Qué relación existe entre los valores calculados en a) y la proporción de moléculas de enzima que se encuentran en la forma de un complejo con el sustrato (ES)? ¿Esta relación es válida en el instante en que se mezcla la enzima con el sustrato o en el estado estacionario?
Problema 3. El Km de cierta enzima es 1,0x10^5 M. La reacción sigue la cinética de Michaelis- Menten. Para una determinada concentración de enzima la velocidad inicial de reacción es 37 μmoles/min a concentración de sustrato 0,1 M. Sin embargo, a una concentración de sustrato 0,01 M, la velocidad inicial de reacción permanece en 37 μmoles/min.
a) Usando cálculos numéricos, demuestre porqué esta reducción (10 veces) en la concentración de sustrato no altera la velocidad inicial de reacción. b) Calcule v0 como fracción de Vmáx para (S) 0,20Km; 0,50Km; 1,0Km; 2,0Km; 4,0Km y 10 Km. c) De los resultados en b), dibuje la curva que relaciona v0/Vmáx con (S)/Km. ¿Cuál es el mejor rango que debe utilizar de (S) para determinar Km?
Problema 4. La penicilina es hidrolizada y con ello inactivada por la penicilinasa, una enzima presente en algunas bacterias resistentes a la penicilina. El peso de esta enzima en Staphylococcus aureus es de 29,6 kDa. La cantidad de penicilina hidrolizada en un minuto en
una disolución de 10 ml que contiene 10-9 g de penicilasa purificada se midió como función
Problema 6. Se estudió la dependencia de la velocidad de una reacción enzimática con la concentración de sustrato. Se midieron en un volumen de reacción de 10 ml, las velocidades iniciales a distintas concentraciones de sustrato y concentración constante de enzima:
Sustrato (M) V0 (μmol/min) 5,0.10-^2 0, 5,0.10-^3 0, 5,0.10-^4 0, 5,0.10-^5 0, 5,0.10-^6 0, 5,0.10-^7 0,
Utilizando cálculos numéricos (no gráficos) conteste lo siguiente: a) ¿Cuáles son los valores de Vmáx y Km?
b) ¿Cuáles son las velocidades iniciales a (S) = 1,0.
2,0.10-3 M. ¿Puede hacer el mismo cálculo a (S) 2,0.10-6 M? d) Suponga que la concentración de enzima en cada mezcla de reacción se incrementa en un
factor de 4. ¿Cuál será el valor de Km? y de Vmax? ¿Cuál será el valor de v a (S) 5,0.
Problema 7. En 10 mezclas de reacción conteniendo la misma concentración de enzima y distintas concentraciones de sustrato (sustrato M), se determinaron las velocidades iniciales:
Sustrato (M) V0 (μmol/min) 1,0.10-^3 5,0.10-^4 1,0.10-^4 5,0.10-^5 3,0.10-^5 2,0.10-^5 1,0.10-^5 5,0.10-^6 9. 1,0.10-^6 2. 5,0.10-^7 1.
Utilizando la ecuación de Lineweaver-Burk, determine gráficamente Km y Vmax. Tenga en cuenta que uno de los factores críticos en la seguridad de esta determinación es la escala elegida para ordenada y abscisa. ¿Qué rango de concentración de sustrato es más útil para estas determinaciones?
Problema 8. En un experimento similar al anterior, se obtuvieron los siguientes datos:
Sustrato (M) V0 (μmol/min) 4,0.10-^4 2,0.10-^4 1,0.10-^4 5,0.10-^5 4,0.10-^5 2,5.10-^5 2,0.10-^5 Grafique v en función de v/(S). Determine Km y Vmáx. ¿Cuál es la ventaja de este tipo de gráfica con respecto al gráfico de la doble recíproca?.
Problema 9. A partir de los siguientes datos, diga cuál es el mejor de los substratos para esta enzima. Explique. Sustrato Km (mM) kcat (s-1) A 0,01 2 x 10 -^2 B 0,1 4x10- C 1 2x10^2 D 10 7x10- E 100 5x10^4 F 1000 2x10^3
Problema 10. Se desea medir parámetros cinéticos de la invertasa en un extracto de levadura comercial. Esta enzima cataliza la siguiente reacción:
sacarosa + H 2 O glucosa + fructosa
Para ello se realiza el experimento diagramado a continuación: Mezcla de reacción 1
Mezcla de reacción 2
Mezcla de reacción 3
Buffer Hac-NaAc0,02 M pH 4,77 2 ml 2 ml 2 ml Sacarosa 0,5 M - - 2 ml Sacarosa 0,05 M 2 ml 4 ml - Extracto enzimático 0,4 ml 0,4 ml 0,4 ml Agua 5,6 ml 3,6 ml 5,6 ml
Las tres mezclas de reacción se incubaron a 20 C tomándose muestras de 1 ml a tiempos 2', 5' 7' y 10' de incubación. Sobre las muestras se midió la actividad de la enzima. Los resultados se expresan como μmoles de sacarosa transformada en 10 ml de mezcla de reacción: