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Pruebas diagnósticas
Pasos a seguir
Anamnesis Observación del ave y del entorno Exploración del animal Pruebas diagnósticas complementarias Necropsia, histopatología DIAGNÓSTICO TRATAMIENTO
PRUEBAS DIAGNÓSTICAS
Hematología: análisis de sangre o Hemograma o Bioquímica o Serología Citología Radiología simple y con contraste Endoscopia Ecografía
A nivel de granja, no tanto pruebas domésticas:
Parasitología, microbiología, PCR Pruebas de bromatología y análisis químicos
HEMATOLOGÍA
Extracción de sangre
Vol. Sanguíneo 1’% peso vivo Vol. Máximo de extracción 10% vo total 1% del peso
AVES Volumen máximo:
1% peso vivo sanos 0,5% peso vivo enfermos
Ej:
Gallinas: 3-4kg 10-40ml Canario: 15-30gr 0,15-0,3ml
Anticoagulante
EDTA: hemólisis o efecto anticoagulante incompleto en córvidos, grullas, avestruces…Agregación de los eritrocitos y las plaquetas: no se forma una acumulación de coágulos y se forma un agregado. Heparina: más usado. Agregación de leucocitos y trombocitos, coloración azulada en la tinción (artefacto). Citrato: lisis celular alteración de los recuentos.
Usar tubos pediátricos (0,5-1ml), volumen recomendado.
Más sangre que anticoagulante la sangre se va a coagular. Mucho anticoagulante agregados que alteran la muestra.
¿Impregnar aguja con heparina? Se hace mucho: son animales muy pequeños con grande riesgo de coagulación. También la aguja es muy estrecha y, al pasar la sangre, se pueden formar agregados.
PRUEBAS
Frotis: mejor sin coagulante para evitar artefactos. Tinción: Diff-quick, Wright-giemsa (modificada para aves). Permite observar características de orgánulos y eritrocitos. Tinción antes de las 48h de la toma, sino fijación con metanol Hemograma antes de las 12h de la toma (hemólisis, alteración morfología celular…) Estandarizar los procedimientos: con según qué aves es muy complicado estandarizar los datos, porque no hay tantas referencias, si estandarizamos nosotros podemos compararlo. Analizadores electrónicos: los eritrocitos tiene núcleo y son más grandes, así que la mayoría de aparatos no sirven, tienen que estar adaptados. Cámara de Neubauer: dilución previa con una solución de recuento. Microhematocrito: evaluación de hematocrito. Capilar (tubo) muy fino que se llena de sangre, se centrifuga para separar el plasma de la parte celular. De esta manera, puedes calcular % de células hay de un tipo. Plasma amarillo: mucosas con ictericia problema hepático. Hemoglobina: espectrofotometría Reticulocitos: Eritrocitos inmaduros. Tinción de ARN, gránulos perinucleares en forma de anillo/ eritrocitos policromáticos (los citoplasmas tienen diferente grado de tinción. Puede ser síntoma de anemia regenerativa).
B y C: eritrocitos policromados D: reticulocito
Bioquímica: mejor trabajar con suero que con plasma, porque son más líquidos. Durante la puesta: sueros lipémicos(más grasos) que pueden alterar los resultados. Inyección intramuscular: alteración de parámetros por necrosis tisular Valores de referencia en pocas especies y animales!!
ALT, AST: su alteración indica que el hígado no funciona bien. Alteración de los hepatocitos. AST: interesante mirar en las aves. Esta enzima está presente en el hígado y músculo, por lo cual debemos valorarlas de manera aislada. CK exclusiva de músculo Ácidos biliares: hasta 100 valor normal, >100 fallo hepático. Puede haber variaciones en momentos postpandriales (después de comer), ya que cuando comemos producimos bilis.
Urea la más utilizada. Si se altera fallo renal crónico. Ácido úrico: su excreción se produce en los tubulos proximales, por lo cual no se ve alterado en caso de deshidratación. Está relacionado en un 90% con la funcionalidad del riñón. Muy fiable.
Centrifugación: los eritrocitos consumen muchísima glucosa centrifugación rápida. Hiperglucemia: debido al estrés
Serología: Una de las herramientas más útiles y prácticas en la vigilancia y diagnóstico de enfermedades en avicultura. La medicina como tal no está muy desarrollada pero a nivel serológico si.Objetivos: Conocer la inmunidad maternal en las aves de un día (correlacionadas con el nivel de anticuerpos de los reproductores) Erradicar enfermedades: Control de vacunaciones en el campo Predicción de fechas de vacunación: Depende de los niveles de Ac. Diagnosticar infecciones
↑Ac ≠ enfermedad
Sensibilidad: capacidad para detectar la enfermedad, detecta animales enfermos (positivos). La prueba “per se”. Tomar muestras demasiado pronto o demasiado tarde por la existencia de bajos niveles de Ac (vacunación spray al primer día). <100% falsos negativos Inmunosupresión bajos niveles de anticuerpos Especificidad: capacidad para detectar individuos sanos (negativos). La prueba “per se”. Mala calidad del suero. Reacciones cruzadas con Ac producidos frente a Ag relacionados. <100% falsos positivos. Animales sanos que sale que tienen anticuerpos. Repetibilidad: capacidad de un test para dar resultados constantes para la misma muestra en pruebas repetidas.
CITOLOGÍA (frotis)
Impronta: raspado del órgano, piel, etc. Presionar con el porta sobre el tejido que se quiera analizar, así se quedan pegados restos celulares. Raspado Aspiración-punción con aguja fina (PAF): masa externa, órgano, médula ósea (punción de esternón, tibiotarso proximal… huesos largos no neumáticos) Hisopo Lavado Fluido abdominal
Ventajas Inconvenientes Sencillez Rapidez procesado e interpretación Riesgo mínimo comparado con la biopsia. Con la biopsia puede no dar suficiente información según de dónde sacamos la muestra. Gran aplicabilidad (tratamiento, pronóstico…) Bajo coste
Poco volumen de muestra Neoplasias Difícil interpretación Riesgo para el animal (hemorragias, fístulas, diseminación…)
Procesado e interpretación de muestras similar que en mamíferos. La muestra es representativa, de alta calidad y teñida correctamente. Conocer las células normales del tejido a analizar: Ej: queremos hacer una biopsia de masa abdominal. Vemos una lesión granulomatosa y vamos al centro de la lesión para coger el 100%. Si solo cogemos parte afectada NO es una buena muestra, ya que no tenemos una referencia, no veremos nada porque estará todo necrosado. Debemos coger parte afectada y parte sana. Reconocer su aspecto Clasificarlas: epitelial/glandular, conectivo, hemático y nervioso.
Identificar
Células normales Artefactos y microorganismos saprofitos, parásitos o patógenos Presencia y tipo de inflamación: heterofílica, eosinofílica, mixta o macrocítica Caracterizar el tipo de efusión Diferenciar neoplasia: maligna o benigna
Il·lustr Artritis. Núcleo redondeado: cèl·lules inflamatorias
RADIOLOGÍA
Técnica muy utilizada. Rayos X simple y de contraste: digestivo, sulfato de bario. En las aves, para tener alta calidad es muy importante tener Intensidad alta (mA), Kv bajos (45-55Kv) y tiempos de exposición bajos (<0,015s) Anestesia: se suele utilizar Sacos aéreos: o Estructuras con menos densidad negro o Estructuras con más densidad blanco
Posicionamiento radiográfico
Proyección:
Ventro-dorsal (decúbito dorsal) Latero-lateral: procurando que las extremidades sean simétricas Alas proyección caudo-craneal (con el ave cabeza abajo y el ala extendida)
Aparato respiratorio
Especies grandes anillos traqueales Siringe calcificada en aves de avanzada edad Pulmones adheridos a pared torácica, patrón reticular típico pulmonar Sacos aéreos también se diferencian.
Aparato cardiocirculatorio ventro-dorsal. El corazón y el hígado tienen forma de reloj de arena. El uno se superpone al otro, por lo tanto es muy difícil delimitar su silueta.
Aparato gastrointestinal Buche bien delimitado cuando está lleno de comida. Esófago y proventrículo, mejor observarlo en VD. Molleja, contenido radiopaco.
Aparato reproductor Gónadas pueden identificarse en época de cría, huevo calcificado e testículos más grandes. Oviducto no visible.
Pulmón reticular, "nebuloso". A la derecha se pueden observar las piedras de la molleja
Il·lustr Sacos aèreos.
Il·lustr Cormorán con anzuelo Il·lustr Huevo
Exploración del aparato digestivo Exploración del aparato respiratorio
Cloaca endoscopia rígida con fluidos.
Cavidad oral, esófago, buche (ayuno!!)
Celioscopia (laparoscopia pélvica)
Exploración del interior del abdomen. Los sacos aéreos facilitan la exploración endoscópica
Incisión roma: después del primer corte se abre mediante presión. Una pequeña incisión en el saco aéreo no afecta se vuelve a cerrar.
Abordajes: Ave en posición decúbito lateral derecho. Pata derecha hacia atrás e izquierda hacia delante. Alas sujetas hacia arriba.
Entrada a saco abdominal: triangulo craneal a masa muscular del fémur, central al sinsacro y caudal a la última costilla. Sexaje Entrada a saco torácico caudal (CATAS). Músculo flexor cruris medialis cruza la última costilla. Permite explorar: o Pulmón o Hígado o Bazo o Riñón o Gónadas o Sacos aéreos o Corazón o Intestinos o Gl. adrenal
ECOGRAFÍA
Dificultad en realización e interpretación del examen utilidad limitada Los sacos aéreos dificultan la visión de la ecografía ventanas acústicas limitadas. Falta de valores de referencia, se trata de una técnica en desarrollo. Útil para el diagnóstico de distensión abdominal, masas…
Il·lust Esófago normal de una gaviota
Esrucura oscura: riñón. Estructura clara: testículo. Se observa el conducto deferente
Punciones y biopsias ecoguiadas No tiene porque requerir anestesia! Vs, endoscopia Aproximaciones: o Craneoventral: zona medial, caudal al borde de la quilla hígado, corazón, ventrículo, proventrículo, duodeno, páncreas. o Caudoventral: zona media, entre los huesos pélvicos ventrículos, gónadas, riñones. o Lateral: detrás de la última costilla gónadas riñones, asas intestinales.
Caso clínico 1 Rita, Buteo regalis (tipo de halcón), 8 meses, hembra Hace 3 días dejó de comer, letargia Alimentación hace 4 días, pierna de liebre y últimos dos días pechuga de paloma (regurgitación)
Se les saca sangre y los resultados muestran heterofilia.
PCV: hematocrito, % de células rojas. o Referencia es de 31-43 y muestra 19, está anémico, ya que los recuentos son bajos. o Dentro de este % SI que entran reticulocitos. En mamíferos no entrarían. Con microcapilar (centrifugación) sí que están, recuento de células totales.
A partir de las analíticas hacemos un frotis y muestra una anemia regenerativa: alto % eritrocitos inmaduros (reticulocitos). Esto puede significar deshidratación. A pesar de que los reticulocitos se volverán eritrocitos, en este momento no tiene el volumen necesario de células necesarias anemia.
Caso clínico 2
Lola, Prairie falcón, 14 años, hembra 4 días sin comer Creen que no ve bien Tuvo el virus del West Nile hace 6 años Acuerdo con el cliente, ha perdido peso
Análisis de sangre: heterófilos alterados, leucocitosis.
Bioquímica:
ácido úrico alto fallo renal. AST muy elevada posible problema hepático, mirar CK para asegurar. CK elevada, se confirma el fallo hepático y también fallo muscular Ácidos biliares normales BUN: Con la sangre que sacan determinan la urea?
