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Una introducción a la microscopía, sus tipos, su poder de resolución y sus aplicaciones en el estudio de las células vivas. Se incluyen conceptos como aumentos, límite de resolución, contraste y diferentes modalidades de microscopía óptica y electrónica. Se mencionan técnicas como fluorescencia, confocal, polarización, interferencia, sombreado metálico, criofractura y criograbado, histoquímica, inmunocitoquímica, hibridación in situ y autorradiografía.
Tipo: Apuntes
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Tema 1.- Técnicas de estudio en Citología e Histología: Microscopía óptica y electrónica. Histoquímica. Inmunocitoquímica. Autorradiografía. Aislamiento de células y cultivos celulares. Fraccionamiento celular.
(campo claro) Confocal https://www.microscopyu.com/
Poder de resolución : Distancia a la que se pueden reconocer como diferentes dos puntos próximos:
Aumentos: 1000 - Límite poder resolución: 0,2 μm
Modo de contraste Mecanismo Características Campo claro El contraste depende de la absorción de la luz Utilizado habitualmente con colorantes histológicos (necesarios para distinguir las estructuras o componentes) Contraste de fases Contraste diferencial de interferencia (DIC) convierten las diferencias en el índice de refracción de las estructuras en diferencias de intensidad luminosa Utilizado para células vivas y muestras sin teñir. El de interferencia produce efecto de relieve Campo oscuro Observación de luz dispersada por las estructuras Produce imágenes de los contornos de células y orgánulos, que pueden aparecer brillantes sobre fondo oscuro.
Célula en cultivo vista con microscopía de luz blanca, contraste de fases e interferencia
Polarización Detecta birrefringencia causada por la organización supramolecular Utilizado para estudiar estructuras regulares (microtúbulos y fibras de colágeno); Fluorescencia Ilumina la muestra con luz UV para excitar la emisión de fluorescencia por parte de la muestra Se utiliza en combinación con marcajes específicos con fluoróforos apropiados Confocal (^) Barrido de la muestra con rayo laser y elaboración de la imagen con un software específico Habitualmente usado con marcadores fluorescentes. Imágenes muy nítidas. Posibilidad de reconstrucciones tridimensionales
Células en cultivo. Microfilamentos marcados con un fluorocromo verde (FITC) Algunos componentes celulares son autofluorescentes. Otros se pueden marcar con moléculas fluorescentes (fluorocromos/fluoróforos) mediante tratamientos físicos, químicos o de ingeniería genética.
Iluminación con láser mediante barrido sobre un plano y captación de un solo plano focal.
Ameba visualizada con microscopía de interferencia y marcaje de filamentos de actina con microscopía de fluorescencia convencional Células en cultivo observadas con microscopía confocal : cromatina en azul, microfilamentos en verde, mitocondrias en rojo
Estudio mediante FRAP del movimiento de la galactosiltransferasa entre el RE y el AG en células de mono. Cinética de proteínas: fluorescence recovery after photobleaching (FRAP)
Interacciones entre proteínas: Fluorescence resonance energy transfer (FRET) Thr FRET: fenómeno mediante el cual un fluorocromo (donador) al ser excitado transfiere energía a otro fluorocromo (aceptor) que se encuentra a una distancia inferior a 10 nm. Permite estudiar distancias e interacciones entre moléculas, que se marcan con los fluorocromos.