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Este documento analiza la escisión y formación de ejes en el nematodo c. Elegans, con énfasis en la especificación autónoma y condicional de células. Se explica cómo la división temprana de las células fundadoras en c. Elegans produce células madre y células fundadoras que generan descendientes diferenciados, y cómo la formación del eje dorsal-ventral y derecha-izquierda se establece en la división de la célula ab. Además, se discute cómo la determinación de los linajes p1 parece ser autónoma y cómo las proteínas skn-1, pal-1 y pie-1 actúan intrínsecamente para determinar el destino de las células derivadas de las cuatro células fundadoras somáticas derivadas de p1. El documento también aborda la gastrulación en c. Elegans y la importancia de las proteínas par en la diferenciación de células neurales.
Tipo: Resúmenes
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La fecundación en C. elegans no es la típica historia de espermatozoides y huevos. La mayoría de los individuos de C. elegans son hermafroditas y producen tanto espermatozoides como óvulos, y la fecundación se produce en un solo individuo adulto. El óvulo se fecunda rodando por una región del embrión (la espermateca) que contiene espermatozoides maduros (Figura 8.16A,B). Los espermatozoides no son las típicas células aerodinámicas de cola larga, sino que son células pequeñas, redondas Y flageladas que se desplazan lentamente con un movimiento ameboide. Cuando un espermatozoide se fusiona con la membrana del óvulo, la rápida síntesis de quitina (la proteína que compone la cutícula) impide la polispermia en el óvulo recién fecundado (Johnston et al. 2010). El óvulo fecundado sufre divisiones tempranas y es extruido a través de la vulva.
El cigoto de C. elegans presenta una división holoblástica rotacional (Figura 8.16C). Durante la escisión temprana, cada división asimétrica produce una célula fundadora (AB, E, MS, C y D) que produce descendientes diferenciados, y una célula madre (el linaje P1-P4). El eje anteroposterior se determina antes de la primera división celular, y el surco de clivaje se sitúa asimétricamente a lo largo de este eje del huevo, más cerca de lo que será el polo posterior. La primera escisión forma una célula fundadora anterior (AB) y una célula madre posterior (P1). El eje dorso-ventral se determina durante la segunda división. La célula fundadora (AB) se divide ecuatorialmente (longitudinalmente, 90º respecto al eje anteroposterior), mientras que la célula P1 se divide meridionalmente (transversalmente) para producir otra célula fundadora (EMS) y una célula madre posterior (P2). La célula EMS marca la región ventral del embrión en desarrollo. El linaje de células madre siempre sufre una división meridional para producir (1) una célula fundadora anterior y (2) una célula posterior que continuará el linaje de células madre. El eje derecha-izquierda se observa en la transición entre el estadio de 4 y 8 células. Aquí, las localizaciones de dos "nietas" de la célula AB (ABal y ABpl) están en el lado izquierdo, mientras que otras dos (ABar y ABpr) están en el derecho (véase la Figura 8.16C).
La decisión sobre qué extremo del ovocito se convertirá en el anterior y cuál en el posterior parece residir en la posición del pronúcleo del espermatozoide (Figura 8.17). Cuando el pronúcleo del espermatozoide entra en el citoplasma del ovocito, éste carece de polaridad. Sin embargo, el ovocito tiene una disposición distinta de proteínas PAR (2) en su citoplasma (Motegi y Seydoux 2014). PAR-3 y PAR-6, que interactúan con la proteína quinasa PKC-3 (cuyas mutaciones causan partición defectuosa), se distribuyen uniformemente en el citoplasma cortical. La PKC-3 restringe las PAR-1 y PAR-2 al citoplasma interno fosforilándolas. El centrosoma del espermatozoide (centro organizador de microtúbulos) contacta con el citoplasma cortical a través de sus microtúbulos e inicia movimientos citoplasmáticos que empujan el pronúcleo masculino hacia el extremo más cercano del ovocito oblongo. Ese extremo se convierte en el polo posterior (Goldstein y Hird 1996). Además, estos microtúbulos protegen localmente a PAR-2 de la fosforilación, permitiendo así que PAR-2 (y su compañero de unión, PAR-1) entre en la corteza más cercana al centrosoma. Una vez que PAR-1 está en el citoplasma cortical, fosforila a PAR-3, causando que PAR-3 (y su pareja de unión, PKC-3) abandone la corteza. Al mismo tiempo, los microtúbulos del espermatozoide
inducen la contracción del citoesqueleto de actina-miosina hacia la parte anterior, eliminando así PAR-3, PAR-6 y PKC-3 de la parte posterior del embrión de una célula. Durante el primer clivaje, la placa de metafase está más cerca de la parte posterior, y el óvulo fertilizado se divide en dos células, una con las PAR anteriores (PAR-6 y PAR-3) y otra con las PAR posteriores (PAR-2 y PAR-1) (Goehring et al. 2011; Motegi et al. 2011; Rose y Gönczy 2014).
El eje dorso-ventral de C. elegans se establece en la división de la célula AB. A medida que la célula se divide, se hace más larga que la anchura de la cáscara del huevo. Esta compresión hace que las células hijas se deslicen, una hacia delante y otra hacia atrás (de ahí sus respectivos nombres, ABa y ABp; véase la Figura 8.16C). La compresión también hace que la célula ABp se sitúe por encima de la célula EMS resultante de la división del blastómero P1. La célula ABp define así la futura cara dorsal del embrión, mientras que la célula EMS -precursora de las células musculares e intestinales- marca la futura superficie ventral del embrión. El eje izquierda-derecha no se aprecia fácilmente hasta el estadio de 12 células, cuando el blastómero MS (procedente de la división de la célula EMS) contacta con la mitad de las "nietas" de la célula ABa, distinguiendo el lado derecho del cuerpo del izquierdo (Evans et al. 1994). Esta señalización asimétrica prepara el terreno para varios otros acontecimientos inductivos que hacen que el lado derecho de la larva se diferencie del izquierdo (Hutter y Schnabel 1995). De hecho, incluso los diferentes destinos neuronales observados en los lados izquierdo y derecho del cerebro de C. elegans pueden remontarse a ese único cambio en el estadio de 12 células (Poole y Hobert 2006). Aunque se observa fácilmente en el estadio de 12 células, el primer indicio de asimetría izquierda-derecha se produce probablemente en el estadio de cigoto. Justo antes de la primera escisión, el embrión gira 120° dentro de su envoltura vitelina. Esta rotación se produce siempre en la misma dirección con respecto al eje anteroposterior ya establecido, lo que indica que el embrión ya presenta una quiralidad izquierda-derecha. Si se inhiben las proteínas del citoesqueleto o las proteínas PAR, la dirección de la rotación y la consiguiente quiralidad se vuelven aleatorias (Wood y Schonegg 2005; Pohl 2011).
C. elegans demuestra tanto el modo condicional como el autónomo de especificidad celular. Ambos modos pueden observarse si se separan experimentalmente los dos primeros blastómeros (Priess y Thomson 1987). La célula P1 se desarrolla de forma autónoma sin la presencia de AB, generando todas las células que normalmente produciría, y el resultado es la mitad posterior de un embrión. Sin embargo, la célula AB aislada sólo produce una pequeña fracción de los tipos celulares que normalmente produciría. Por ejemplo, la blastómera ABa resultante no produce los músculos faríngeos anteriores que habría producido en un embrión intacto. Por lo tanto, la especificación de la blastómera AB es condicional y necesita interactuar con los descendientes de la célula P1 para desarrollarse con normalidad. ESPECIFICACIÓN AUTÓNOMA La determinación de los linajes P1 parece ser autónoma, con destinos celulares determinados por factores citoplasmáticos internos más que por interacciones con células vecinas (ver Maduro 2006). Las proteínas SKN-1, PAL-1 y PIE-1 codifican factores de
puede observarse en el desarrollo del linaje celular del endodermo. En el estadio de 4 células, la célula EMS necesita una señal de su vecina (y célula hermana), la blastómera P2. Normalmente, la célula EMS se divide en una célula MS (que produce los músculos mesodérmicos) y una célula E (que produce el endodermo intestinal). Si se elimina la célula P2 en el estadio inicial de 4 células, la célula EMS se dividirá en dos células MS y no se producirá endodermo. Sin embargo, si la célula EMS se recombina con el blastómero P2, formará endodermo; no lo hará, sin embargo, si se combina con ABa, ABp o ambos derivados AB (Goldstein 1992). La especificación de la célula MS comienza con el SKN-1 materno que activa los genes que codifican factores de transcripción como MED-1 y MED-2. La señal POP-1 (que codifica la proteína TCF que une β-catenina al ADN) bloquea la vía hacia el destino E (endodérmico) en la célula MS prospectiva para convertirse en MS bloqueando la capacidad de MED-1 y MED-2 para activar el gen tbx-35 (Figura 8.20; Broitman- Maduro et al. 2006; Maduro 2009). En todo el reino animal, se sabe que las proteínas TBX son activas en la formación del mesodermo; TBX-35 actúa para activar los genes mesodérmicos de la faringe (pha-4) y los músculos (hlh-1) de C. elegans. La célula P2 produce una señal que interactúa con la célula EMS e instruye a la hija EMS contigua para que se convierta en la célula E. Este mensaje se transmite a través de la cascada de señalización Wnt (Figura 8.21; Rocheleau et al. 1997; Thorpe et al. 1997; Walston et al. 2004). La célula P2 produce la proteína MOM-2, una proteína Wnt de C. elegans. MOM-2 es recibida en la célula EMS por la proteína MOM-5, una versión de C. elegans de la proteína receptora Wnt Frizzled. El resultado de esta cascada de señalización es la regulación a la baja de la expresión del gen pop-1 en la célula hija EMS destinada a convertirse en la célula E. En embriones deficientes en pop-1, ambas células hijas EMS se convierten en células E (Lin et al. 1995; Park et al. 2004). Así pues, la vía Wnt es crítica en el establecimiento del eje anteroposterior de C. elegans. Sorprendentemente, como veremos, la señalización Wnt parece especificar el eje A-P en todo el reino animal. La célula P2 también es fundamental para dar la señal que distingue ABp de su hermana, ABa (véase la figura 8.21). ABa da lugar a las neuronas, la hipodermis y las células de la faringe anterior, mientras que ABp sólo produce neuronas y células hipodérmicas. Sin embargo, si se invierten mentalmente las posiciones de estas dos células, sus destinos se invierten de forma similar y se forma un embrión normal. En otras palabras, ABa y ABp son células equivalentes cuyos destinos están determinados por sus posiciones en el embrión (Priess y Thomson 1987). Estudios genéticos y de transplante han demostrado que ABp se diferencia de ABa por su interacción con la célula P2. En un embrión sin alteraciones, tanto ABa como ABp entran en contacto con el blastómero EMS, pero sólo ABp entra en contacto con la célula P2. Si la célula P2 muere en el estadio temprano de 4 células, la célula ABp no genera su complemento normal de células (Bowerman et al. 1992a,b). El contacto entre ABp y P2 es esencial para la especificación de los destinos de las células ABp, y la célula ABa puede convertirse en una célula de tipo ABp si es forzada a entrar en contacto con P (Hutter y Schnabel 1994; Mello et al. 1994). Esta interacción está mediada por la proteína GLP-1 en la célula ABp y la proteína APX-1 (exceso de faringe anterior) en el blastómero P2. En los embriones cuyas madres tienen glp-1 mutante, ABp se transforma en una célula ABa (Hutter y Schnabel 1994; Mello et al. 1994). La proteína GLP-1 es miembro de una familia ampliamente conservada llamada proteínas Notch, que sirven como receptores de la membrana celular en muchas interacciones célula-célula; se observa tanto en las
células ABa como en las ABp (Evans et al. 1994) (3). Uno de los ligandos más importantes para las proteínas Notch como la GLP-1 es la proteína Delta de la superficie celular. En C. elegans, la proteína similar a Delta es APX-1, y se encuentra en la célula P2 (Mango et al. 1994a; Mello et al. 1994). Esta señal APX-1 rompe la simetría entre ABa y ABp, ya que estimula la proteína GLP- únicamente en el descendiente AB que toca, es decir, el blastómero ABp. De este modo, la célula P2 establece el eje dorso-ventral de C. elegans y confiere a la blastómera ABp un destino diferente al de su célula hermana. INTEGRACIÓN DE LA ESPECIFICACIÓN AUTÓNOMA Y CONDICIONAL: DIFERENCIACIÓN DE LA FARINGE DE C. ELEGANS De la discusión anterior se desprende que la faringe es generada por dos grupos de células. Un grupo de precursores faríngeos procede de la célula EMS y depende del gen skn-1 materno. El segundo grupo de precursores faríngeos procede del blastómero ABa y depende de la señalización GLP-1 de la célula EMS. En ambos casos, las células precursoras faríngeas (y sólo éstas) reciben instrucciones para activar el gen pha-4 (Mango et al. 1994b). El gen pha-4 codifica un factor de transcripción que se asemeja a la proteína HNF3β de los mamíferos. Los estudios de microarrays realizados por Gaudet y Mango (2002) revelaron que el factor de transcripción pha- activa casi todos los genes específicos de la faringe. Parece que el factor de transcripción PHA- puede ser el nodo que toma las entradas maternas y las transforma en una señal que transcribe los genes cigóticos necesarios para el desarrollo de la faringe.
La gastrulación en C. elegans comienza muy pronto, justo después de la generación de la célula P en el embrión de 26 células (Figura 8.22; Skiba y Schierenberg 1992). En ese momento, las dos hijas de la célula E (Ea y Ep) migran desde el lado ventral hacia el centro del embrión. Allí se dividen para formar un intestino formado por 20 células. Antes del movimiento de las células Ea y Ep existe una blastocélula muy pequeña y transitoria, y su migración hacia el interior crea un diminuto blastoporo. La siguiente célula en migrar a través de este blastoporo es la célula P4, precursora de las células germinales. Esta célula migra hasta situarse debajo del primordio intestinal. A continuación se desplazan las células mesodérmicas: los descendientes de la célula MS migran hacia el interior desde el lado anterior del blastoporo, y los precursores musculares derivados de las células C y D entran por el lado posterior. Estas células flanquean el tubo intestinal por los lados izquierdo y derecho (Schierenberg 1997). Por último, unas 6 horas después de la fecundación, las células derivadas del AB que contribuyen a la faringe se introducen en el interior, mientras que las células del hipoblasto (precursoras de las células cutáneas hipodérmicas) se desplazan ventralmente por epibolia, cerrando finalmente el blastoporo. Los dos lados del hipodermis están sellados por E-cadherina en las puntas de las células precursoras que se encuentran en la línea media ventral (Raich et al. 1999). Durante las 6 horas siguientes, las células se mueven y se convierten en órganos, mientras que el embrión en forma de bola se estira hasta convertirse en un gusano con 556 células somáticas y 2 células madre de la línea germinal (véase Priess y Hirsh 1986; Schierenberg 1997). Existen pruebas (Schnabel et al. 2006) de que, aunque estos movimientos de gastrulación proporcionan una buena primera aproximación a la forma final, se utiliza un "enfoque celular" adicional para mover las células a disposiciones funcionales. En este caso, las células del mismo destino se ordenan a lo largo del eje anteroposterior. También se produce otro modelado; otras 115 células sufren