














Prepara tus exámenes y mejora tus resultados gracias a la gran cantidad de recursos disponibles en Docsity
Gana puntos ayudando a otros estudiantes o consíguelos activando un Plan Premium
Prepara tus exámenes
Prepara tus exámenes y mejora tus resultados gracias a la gran cantidad de recursos disponibles en Docsity
Prepara tus exámenes con los documentos que comparten otros estudiantes como tú en Docsity
Encuentra los documentos específicos para los exámenes de tu universidad
Estudia con lecciones y exámenes resueltos basados en los programas académicos de las mejores universidades
Responde a preguntas de exámenes reales y pon a prueba tu preparación
Consigue puntos base para descargar
Gana puntos ayudando a otros estudiantes o consíguelos activando un Plan Premium
Comunidad
Pide ayuda a la comunidad y resuelve tus dudas de estudio
Ebooks gratuitos
Descarga nuestras guías gratuitas sobre técnicas de estudio, métodos para controlar la ansiedad y consejos para la tesis preparadas por los tutores de Docsity
Ejercicios resueltos espectroscopia UV visible, fluorescencia
Tipo: Ejercicios
1 / 22
Esta página no es visible en la vista previa
¡No te pierdas las partes importantes!















En oferta
Problemas
1.- Completar los espacios en blanco de la siguiente tabla. Cuando sea necesario suponer que el PM de la especie química que absorbe es 280,00.
A % T (^) b(cm) M mg/L
a 0,296 2,50 123
b 19,6 1,50 6,91 10-
c 6,42 10^3 1,10^ 7,84 10-
2.- ¿Cuál será la M de una solución de KMnO 4 si se tomaron 5,00 mL, se llevaron a 20,00 mL y al medir la T se observó un valor del 40,0%? Una solución testigo de KMnO 4 cuya concentración expresada en Mn(II) es 5,50 g/L presenta una T = 30,0%. PA Mn = 55,000.
3.- Calcular la concentración de una solución de Cr 2 O 7 2-^ expresada en g % de Cr, si una dilución al décimo de la misma tiene una transmitancia del 30,0%. Un testigo de Cr 2 O 7 2-^ de concentración 1,00 10 -3^ M presenta una T = 45,0%. PA Cr = 52,000.
4.- ¿Cuál será la concentración de una solución de FeSO 4 expresada en moles por litro, si una dilución 3/8 de la misma, realizada empleando un reactivo de color, tiene una T = 20,0%? El testigo se obtuvo disolviendo 5,6 mg de Fe en de ácido y llevando a volumen final de 10,00 mL con el reactivo de color, siendo su transmitancia de 40,0%. PA Fe = 56,000.
5.- El Cu2+^ forma con el NH 3 en exceso un complejo de color azul intenso que muestra un máximo de absorción a 613 nm. Cu2+^ + 4 NH 3 Cu(NH 3 ) 4 2+
Calcular la concentración de cobre en g/L presente en una muestra incógnita, si se empleó el siguiente protocolo:
Muestra (mL) Testigo 8,00 g/L (mL) NH 3 (mL) HAc (mL) T %
5,00 - 2,00 5,00 30,
Nota: Se utiliza HAc para dar la fuerza iónica que asegura la estabilidad del complejo.
6.- Se determina el contenido de fósforo de un mineral mediante espectrofotometría. Para ello se disuelven 8,3475 g de muestra, se tratan de manera que todo el fósforo se transforme en el complejo azul de ortofosfato y se completa con agua destilada a volumen final de 100,00 mL. La transmitancia de la solución resultante es 30,6 %. Si la solución patrón de ortofosfato de sodio, que se trata de igual manera, y que tiene una concentración final de 2,467 10-4^ M dio una transmitancia de 20,5 %, calcular el contenido de fósforo en la muestra expresado en ppm de Na 3 PO 4. PM Na 3 PO 4 = 164,
12.- Para cuantificar el contenido de piroxicam en un comprimido se utiliza HPLC con detección UV-visible. Se pesan 12,9 mg de un comprimido que pesa 632,0 mg (peso promedio de 20 comprimidos), se disuelven en 1 mL de HCl en matraz, se enrasa con HCl hasta 5,00 mL, y se inyectan 25,0 L de esta solución en el cromatógrafo, midiéndose una señal de 30,5 unidades de mili-absorbancia (mA). De un testigo de piroxicam que contiene 6,80 mg de patrón en 25,00 mL de HCl se toman 10,00 mL y se diluyen a 50,00 mL con HCl. La señal cromatográfica después de inyectar 25,0 L de testigo es de 41,0 mA. Calcular el contenido de piroxicam en el comprimido (en mg).
13.- La calibración de una micropipeta se realiza empleando un colorante orgánico según el siguiente protocolo: se emite 10 veces el volumen de la micropipeta en un matraz de 100,00 mL y se enrasa con solvente apropiado. De esta dilución se toma una alícuota y se lee una T = 42,0%.
Calcule el volumen real de la micropipeta expresado en L, si un volumen de 1,00 mL medido con una pipeta perfectamente calibrada llevada a 100,00 mL en un matraz, dio una T = 45,0%.
14.- Se desea determinar el contenido de Fe(III) en una muestra problema, disponiéndose de un fotocolorímetro. Para ello, a 3,00 mL de muestra se adicionan 2,00 mL de o-fenantrolina, obteniéndose una lectura de transmitancia de 7,0 %. Un testigo conteniendo 28,0 ppm de Fe(III) se procesa del mismo modo que la muestra incógnita, obteniéndose una lectura de transmitancia de 30,5 %. En virtud de los resultados obtenidos, el analista realiza una segunda lectura de la muestra incógnita, luego de realizar una dilución 1/5 de la misma y de procesar de la misma manera que la primera muestra y el testigo. La nueva lectura de transmitancia de la muestra es de 51,2 %. a) Justificar el proceder del analista. b) Calcular la concentración de la muestra, expresada en mg% de Fe.
A- Elegir cuál/es de las siguientes aseveraciones es/son correcta/s:
1- Siendo el error fotométrico: (C/C) / T = 0,434 / T logT El término T es: a) La incertidumbre en la lectura T. b) Un factor constante para todos los aparatos que depende del desvío de la ley de Beer. c) La variación de la T al cambiar en una unidad de concentración.
2- El error fotométrico en un instrumento dado es: a) Dependiente de la naturaleza de la muestra analizada. b) Dependiente de la concentración de la muestra.
B- ¿Cómo calcula experimentalmente el T?
a) Calcule la incertidumbre en la lectura de la T, cuando una T = 0,450 produjo un error relativo en la concentración de 1,50 %. b) En qué se diferencia la curva de error relativo de concentración (C/C) vs. A de un fotómetro de baja calidad y lectura analógica, de la de un espectrofotómetro de buena calidad y lectura digital. ¿A qué se debe dicha diferencia?
17.- Se desea determinar la concentración de Cr3+^ en una muestra de agua, mediante formación de un complejo coloreado. Para la construcción de la curva de calibración, se miden distintos
volúmenes de solución patrón de 5,00 ppm de Cr3+, se agrega un exceso de complejante y se completa a volumen final de 15,00 mL. Las absorbancias medidas de las soluciones de testigos son:
Vol. de Cr3+^ patrón (mL) 1,00 2,00 3,00 4,
Absorbancia 0,123 0,246 0,369 0,
a) Verifique si se cumple la ley de Beer, justifique su respuesta. Calcular el coeficiente de absortividad molar del complejo. PM del complejo = 350,00; PA Cr = 53,00; b = 1,00 cm. b) Una muestra incógnita de 5,00 mL de agua residual de una industria se trata con el complejante anterior, se diluye a 15,00 mL, obteniéndose una absorbancia de 0,287. Determine la concentración de Cr3+^ en la muestra, expresada en ppm.
18.- Un compuesto coloreado tiene dos bandas de absorción en el visible. La banda A tiene max = 550 nm, correspondiente al verde, con un ancho espectral de 50 nm; la banda B tiene max = 680 nm, correspondiente al rojo, con un ancho espectral de 140 nm. Los siguientes resultados se obtuvieron mediante un fotómetro de filtro (longitud de paso óptico = 1,00 cm).
Concentración Testigo (M)
Filtro verde T (%) Concentración Testigo
(M)
Filtro rojo T (%)
a) Justificar si se cumple o no la ley de Beer para la banda A. Calcule el valor de para la solución más diluida. b) Justificar si se cumple o no la ley de Beer para la banda B. Calcule el valor de para la solución más diluida. c) Justificar que filtro utilizaría para la determinación cuantitativa del compuesto en cuestión. d) Si dispusiera de un espectrofotómetro con red de difracción como monocromador, justifique a qué longitud de onda realizaría las mediciones para la determinación cuantitativa del compuesto. Suponga que la única causa de desvío de la ley de Beer es la falta de monocromaticidad de la luz.
19.- Se desea determinar la concentración de un antibiótico utilizado en el tratamiento de infecciones urinarias, pues se sospecha que el medicamento está siendo adulterado. Se conoce que el fármaco presenta un espectro de absorción de las siguientes características:
Pico A: 340 nm; ancho de banda medio: 10 nm; = 780 (cm M)- Pico B: 546 nm; ancho de banda medio: 90 nm; = 90 (cm M)- Pico C: 280 nm; ancho de banda medio: 20 nm; = 14000 (cm M)-
Cu2+^ + Y 4-^ CuY2-
El complejo CuY2-^ presenta un máximo de absorción a 750 nm y cumple con la ley de Beer en un amplio rango de concentraciones. Tanto el Cu2+^ como el ligando no absorben a dicha . El protocolo de trabajo empleado fue: 100,00 mL de orina se llevan a volumen final de 500,00 mL y luego se procesan de acuerdo al siguiente esquema:
Muestra (mL) Sol. de Y4-^ (mL) Testigo (1,00 ppm) (mL) Agua Absorbancia
5,00 10,00 - 5,00 0,
Expresar el contenido de Cu en orina en g/L.
25 .- Para determinar el contenido de Pb en una muestra de un efluente industrial, se toman 2 alícuotas de 100,00 ml de la muestra y se realiza una extracción del metal, según el siguiente protocolo de trabajo: a) A la primera alícuota se le adiciona una sol. de un quelante para formar un complejo coloreado y neutro con el ión. Todo el complejo se extrae con 5,00 ml de un solvente orgánico no miscible con agua. La transmitancia de la solución orgánica es de 42,5 %. b) A la segunda alícuota se le adicionan 0,0100 ml de una sol. patrón que contiene 15,00 ppm de plomo (despreciar el cambio de volumen producido por esta operación). Luego se realiza el mismo tratamiento que en a), siendo la T % de 35,5. c) 100,00 ml de H 2 O destilada que no contiene plomo se tratan del mismo modo que el descrito en a), obteniéndose una T % de 95,3. Determinar el contenido de plomo en el líquido efluente, expresándolo en ppm de Pb.
1.- De acuerdo a la ecuación de la Ley de Lambert y Beer:
A = - log T = a b c
Donde: A = absorbancia b = camino óptico T = transmitancia c = concentración molar a = coeficiente de absortividad Si la concentración está expresada en M y el paso óptico en cm a = = coeficiente de absortividad molar (cm-1^ M-1).
A % T (^) b(cm) M mg/L
a 0,296 50,6 2,68 10^2 2,50 4,41 10-4^123
b 0,708 19,6^ 6,83 10^1 1,50^ 6,91 10-3^1935
c 0,554 27,9 6,42 10^3 1,10 7,84 10-5^ 21,
55,00 g ------ 1 mol 5,50 g ------ x = 0,10 mol AT = a b CT
AM dil = a b CM dil
Dividiendo miembro a miembro:
AT/AM dil = CT/CM dil
CM dil = AM dil CT/AT = 0,398 0,1 M / 0,523 = 0,076 M
1000 mL ------ 0,381 moles 5,00 mL ------ 7,61 10-3^ moles 20,00 mL ------ x = 1,52 10-3^ moles 1000 mL ------ x = 0,30 moles 0,30 M 3.- AT/AM dil = CT/CM dil
CM dil = AM dil CT/AT = 0,523 1,00 10-3^ M / 0,347 = 1,51 10-3^ M
CM/ CM dil = 10
CM = 10 1,51 10 -3^ M = 1,51 10-2^ M
1000 mL ------ 1,51 10-2^ moles 1 mol Cr 2 O 7 2-^ ------ 2 moles Cr 100 mL ------ x = 1,51 10-3^ moles 1,51 10-3^ moles ------ x = 3,02 10-3^ moles 1 mol ------52,000 g 3,02 10-3^ moles ------ x = 0,1568 g 0,157 g %
0,8453 mg ------ 100 mL 3,250 g ------ 2,11 mg
2,11 mg = x ------ 250 mL 1000 g ------ x = 650,2 mg
6,5 10^2 ppm
8.- A’M = AM - ABco = 0,555 – 0,010 = 0,
A’T = AT - ABco = 0,260 – 0,010 = 0,
A’M = a b (50/100) CM
A’T = a b (10/100) 3 ppm
dividiendo miembro a miembro y despejando: CM = 1,31 ppm
1,090 g muestra ---------- 0,00131 g Ni
100 g ---------- x = 0,120 g
0,120 % P/P
9.- 500,0 L suero + 50,0 L precipitante Vf = 550,0 L 100,0 L de muestra
A’M = AM - ABco = 0,378 – 0,012 = 0,
A’T = AT - ABco = 0,244 – 0,012 = 0,
( 0 , 020 mL 200 mg/dL)/2,1mL
0,100mLC /2,1mL A'
T
M ^ C^ M = 63,10 mg/dL
100 mL------- 63,10 mg HDL-colesterol 0,500 mL -------- 0,34705 mg
0,550 mL------- x = 0,34705 mg 1000 mL ------- x = 694,1 mg = 0,6941 g
0,69 g/L
10.- 1,00 mL suero + 2,00 mL de reductor + 2,00 mL ácido + 1,00 mL TCA Vf = 6,00 mL
A’M = AM - ABco M = 0,198 – 0,012 = 0,
A’T = AT - ABco T = 0,245 – 0,020 = 0,
( 1 , 00 mL 45 mg/dL)/3,00mL
4,00mLC /5,00mL A´
T
M (^) C (^) M = 15,5 mg/dL
100 mL------- 15,5 mg Fe 1,00 mL -------- 0,93 mg 6,00 mL------- x = 0,93 mg 100 mL ------- x = 93 mg 93 mg/dL
Muestra procesada: 104 mg de principio activo (2,0 mL de NaOH) en Vf= 25,00 mL CM pro
TM pro = 38,0 % AM pro = 0, TM pro = 44,0 % AM pro = 0,
25,00 mL ------ 10,0 mg patrón 1 mL ------ x = 0,400 mg patrón De la solución patrón se realiza una dilución al quinto CT final =CT/5 =0,08 mg/mL
CM pro = AM pro CT final/AT = (0,420x 0,08 mg/mL)/0, C (^) M pro = 0,094 mg/mL
1 mL ------ 0,094 mg 104 mg pesados ------ 2,359 mg principio activo 25,00 mL ------ x = 2,359 mg 500 mg ------ x = 11,3 mg
11,3 mg principio activo/cápsula
Testigo: 6,8 mg de patrón en 25 mL = 0,272 mg/mL, a esta solución patrón se realiza una dilución
al quinto C (^) T final =CT/5 =0,054 mg/mL (Solución inyectada en el HPLC)
CM = AM CT final/AT = (0,0305 x 0,054 mg/mL)/0,
C (^) M = 0,0402 mg/mL (Concentración de la solución de la muestra inyectada en el HPLC)
0,0402 mg de piroxicam -------1 mL 0,201 mg (piroxicam)-------12,9 mg (comprimido) X ---------5 mL X --------632 mg X = 0,201 X = 9,9 mg
Rta.: 9,9 mg de piroxicam/comprimido
13.- 10 VMP colorante Vf = 100 mL A 1 = 0,377 = a b C 1
1,00 mL colorante Vf = 100 mL A 2 = 0,347 = a b C 2
Dividiendo miembro a miembro:
col MP
col 1
2
VMP = 0,109 mL 109 L
b)
(^0 10 20 30) Absorbancia 40
0
2
4
6
8
10
12
Espectrofotómetro de baja calidad
Espectrofotómetro de alta calidad
La incertidumbre en la lectura de la T (T) en un instrumento es la resultante de todas las fuentes de ruido instrumental. Según los componentes de cada instrumento prevalece alguna de las distintas fuentes de ruido, en consecuencia, la curva de (C/C)100 vs. A presentará una forma diferente de acuerdo a las características de cada equipo. Si observamos las curvas anteriores podemos ver que las mediciones de concentraciones a absorbancias menores a 0,1 no son muy confiables y deben evitarse independientemente de la calidad del equipo; mientras que las mediciones de concentraciones a absorbancias mayores a 1, los errores son grandes en un equipo de baja calidad pero no así en un instrumento de mayor calidad y lectura digital.
17.- a) Para verificar el cumplimiento de la ley de Beer calculamos la absortividad para cada uno
La absortividad obtenida a partir de los todas las soluciones de testigo (expresadas en ppm de Cr) es 0,369 mg-1^ (Cr) L cm-1^ , lo que permite concluir que se cumple la ley de Beer en el rango de concentraciones ensayado. Otra forma de verificar el cumplimiento de la ley de Beer es realizando la gráfica de absorbancia en función de concentración. a = 0,369 mg-1^ (Cr) L cm -1^ y PA Cr = 53,00 = 19557 M-1^ cm-1^ = 195 10^2 M-1^ cm-
b) AMf = a b CMf
C (^) Mf = 0,287/0,369 mg-1^ L cm -1^ 1 cm = 0, 777 mg/L = 0, 777 ppm
C (^) M = C (^) Mf 15,00 / 5,00 = 2,33 ppm 2,33 ppm
(^0) 2,5 x 10 -4 (^) 5,0 x 10 -
0,
0,
0,
Absorbancia
Concentración (M)
18.- El cumplimiento de la ley de Beer se puede verificar a través del cálculo de los para las distintas concentraciones del testigo o construyendo la curva de calibración.
a) Filtro verde – Banda A
CT (M) A
No se cumple la ley de Beer. Para 5,00 10 -6^ M = 4,00 104 M-1cm-
b) Filtro rojo – Banda B
CT (M) A
Se cumple la ley de Beer. Para 1,00 10 -4^ M = 1,10 103 M-1^ cm-
c) Se debe usar el filtro rojo dado que a la longitud de onda seleccionada con dicho filtro se cumple la ley de Beer. De acuerdo a las bandas de absorción del compuesto, banda A: (^) max = 550 nm, ancho espectral = 50 nm y banda B: (^) max = 680 nm, ancho espectral = 140 nm, al trabajar con un filtro de absorción a la (^) max = 550 nm se producen desvíos de la ley de Beer por falta de monocromaticidad de la luz.
d) Si se elimina la causa de desviación de la linealidad utilizando una red de difracción sería más conveniente trabajar a max = 550 nm.
19.- a)
Fuente Monocromador (^) Celda Detector Dispositivo de lectura
1 x 10-
0
0,
.0,
0,
Absorbancia
Concentración (M)
2 x 10-
23.- AM = a b CM
AM+T = a b (0,05 mg/mL 1/26 + CM 25/26)
dividiendo miembro a miembro y despejando CM = 7,73 10-3^ mg/mL
1mL ----------- 7,73 10-3^ mg 2 mL ------------ 0,773 mg 100 mL-------- x= 0,773 mg 1 mL ------------ x= 0,386 mg
0,39 mg /mL
24.- A´M = AM – ABco = 0,180 = a b (VM C (^) M dil / VF )
A´M+T = AM+T – ABco = 0,470 = a b [(VM CM dil + VT CT)/ VF ]
dividiendo miembro a miembro y despejando: CM dil = 0,12414 mg/L = 1,2414 10-4^ g/L
C (^) M = C (^) M dil (500/100) C (^) M = 6,207 10-4^ g/L 6,2 10-4^ g/L
25.- Se realiza una extracción con solvente con concentración de la muestra, siendo VM =
100,00 mL y VF = 5,00 mL
A´M = AM – ABco = 0,351 = a b (VM CM / VF )
A´M+T = AM+T – ABco = 0,429= a b [(VM C (^) M + V (^) T C (^) T)/ VF ]
dividiendo miembro a miembro y despejando: CM = 0,00676 mg/L
6,8 10-3^ ppm
1.- Se trató una muestra de 5,00 mL de sangre con tricloroacético para precipitar las proteínas. Después de centrifugar, la disolución resultante se llevó a pH 3 y se procedió a la extracción con dos alícuotas de 5,00 mL de metil isobutil cetona conteniendo el agente orgánico complejante de plomo APCD. El extracto se aspiró directamente en llama de aire/acetileno, dando una absorbancia de 0,444 a 283,3 nm. Se trató de la misma forma una alícuota de 5,00 mL de un solución patrón conteniendo 0,250 ppm de Pb, dando una absorbancia de 0,366. Calcular las ppm de Pb en la muestra suponiendo que se cumple la ley de Beer.
2.- Se determinó el cromo en una muestra acuosa midiendo alícuotas de 10,00 mL de la muestra en cinco matraces aforado de 50,00 mL. Antes de enrasar los matraces, se añadieron a cada uno de ellos volúmenes distintos de patrón de 12,2 ppm de Cr.
Muestra (mL) Patrón (mL) Absorbancia 10,00 0,00 0, 10,00 10,00 0, 10,00 20,00 0, 10,00 30,00 0, 10,00 40,00 0,
a) Deducir la expresión de la recta. Representar los datos. b) Si luego de realizar un ajuste por mínimos cuadrados se obtuvo la siguiente ecuación:
Calcular las ppm de Cr en la muestra.
1.- 5,00 mL de muestra se lleva a pH = 3 se realiza la extracción con solvente orgánico con un complejante. Se procesan de la misma manera el testigo.
AT = 0,366 C (^) T = 0,250 ppm
Considerando el cumplimiento de la ley de Beer
0,366 ------- 0,250 ppm 0,444 ------- x = 0,303 ppm CM = 0,303 ppm
2.- a) M T
M M T T
M M T
M C' C'
(10mLC V C)/50mL
10mLC/50mL A
M
M T M M
M M M T C'
A C' C'
1.- Realice un diagrama en bloques de un equipo destinado a mediciones de fluorescencia, indicando sus componentes y características particulares (fuente, tipo de selector de , material de celda, detector). Para un compuesto que presenta fluorescencia, se realizó una curva de intensidad vs. concentración, obteniéndose la siguiente gráfica:
concentración
I fluorescencia
Justifique y proponga las causas que dan origen a la forma de la gráfica obtenida.
2.- Una muestra de 10,00 mL de gaseosa conteniendo quinina (compuesto orgánico fluorescente) presenta una intensidad de fluorescencia de 58,7. Luego de agregar a ese volumen de muestra 1, mL de un testigo de concentración 2,06 ppm en quinina, la intensidad de fluorescencia ascendió a 79,6 (medida en la misma celda). Al agregar a un idéntico volumen de la muestra original 1,00 mL de otro testigo de concentración: 20,1 ppm en quinina, la intensidad de fluorescencia fue 59,5. En otra experiencia, se observó que al agregar a la muestra original 2,00 mL de una solución 0,10 M de anión Cl-, la muestra presentó una intensidad de fluorescencia de 17,2. a) Utilizando los datos que Ud. considere pertinentes, calcule la concentración de quinina en la muestra original de gaseosa. b) Explicar con fundamentos teóricos los fenómenos observados al agregar cada uno de los testigos de quinina y al agregar la solución de Cl-.
3.- Se determinará el contenido de quinina por espectrofluorometría. Para ello 0,50 mL de una solución de concentración 1,56 ppm de quinina se agregan a 10 mL de H 2 SO 4 1 M observándose una intensidad de fluorescencia de 22,5. A una muestra de 20,00 mL de una gaseosa coloreada se le agregaron 5,00 mL de agente decolorante. A una alícuota de 0,20 mL de la solución anterior, se adicionan sobre 5,00 mL de H 2 SO 4 y la intensidad de fluorescencia leída es 18,4. a) Indicar las ppm de quinina en la gaseosa. b) Explique cómo afecta en la emisión de fluorescencia: b1- la rigidez estructural de la molécula; b2- la temperatura; b3- el solvente; b4- la concentración.
Las desviaciones se producen principalmente debido a que cuando la concentración aumenta por encima de un cierto valor cobran importancia los términos de orden superior del desarrollo de la serie. Otros dos factores que producen desviaciones negativas de la linealidad a alta concentración son el autoapagamiento y la autoabsorción.
2.- a) F = K C
FM KC M= 58,
M T
M M T T M T V V
dividiendo miembro a miembro:
M M T T C V V
C (^) M 0 , 419 ppm
0,419 ppm
Fuente Filtro o monocromador de excitación
Atenuador
Cubeta
Fotomultiplicado r de referencia
Amplificador diferencial
Filtro o monocromador de emisión
Fotomultiplicado r de muestra
Dispositivo de lectura