Hemocultivo y Gasometría en Pediatría: Guía Práctica para Médicos, Diapositivas de Medicina

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Semiología pediátrica

Hospital del Niño

Francisco de Icaza

Bustamante

Fausto Yumisaca

Hemocultivo y Gasometría

Hemocultivo.

Importancia clínica de los hemocultivos

La presencia de microorganismos vivos en episodios

de bacteriemias y/o septicemias está asociado con

una considerable morbilidad y mortalidad.

20-50% de los pacientes con episodios de

bacteriemias o funguemias fallecen.

La mayoría de los episodios de sepsis ocurren en

hospitales y son debidos a microorganismos con alta

resistencia a los antimicrobianos

Indicaciones de hemocultivo: infecciones localizadas

• (^) Meningitis bacteriana
• (^) Endocarditis
• (^) Neumonía Grave
• (^) Infecciones osteoarticulares
• (^) ITU en <3 meses

Grupo A: Se

recomienda

extracción

• (^) Neumonía con hospitalización
• (^) ITU febril con hospitalización
• (^) Sospecha de peritonitis/apendicitis complicada
• (^) Infección ORL complicada

Grupo B:

Considerar

extraer en

• (^) Neumonía sin hospitalización
• (^) Pielonefritis en niños sanos sin ingreso hospitalario
• (^) Ippb superficiales no complicadas

Grupo C: no se

recomienda

extraer de rutina:

En que momento tomar un hemocultivo?

Antes del pico febril –

Después del comienzo de la

fiebre

Antes de la administración

de antibióticos

Si el tratamiento antibiótico

empírico es una emergencia,

se puede realizar

inmediatamente después de

la administración del ATB

Si está recibiendo ATB, debe

realizarse inmediatamente

antes de la próxima dosis de

antibiótico.

Técnica de extracción

• (^) Disponer de un lugar limpio y un campo estéril para colocar los insumos
• (^) Debe realizarlo alguien capacitado
• (^) Tener todo el material antes de iniciar el procedimiento
• (^) Obtener ayuda en casos de niños que no cooperan Recomendaciones Generales
• (^) Torniquete
• (^) Jeringas y agujas de punción
• (^) Gasas estériles
• (^) Guantes de manejo y estériles
• (^) Alcohol etílico 70% Sachet o Clorhexidina alcohólica al 2%
• (^) Frascos de hemocultivos
• (^) Mascarilla, bata Materiales

Vía Venosa Central Técnica aséptica Desinfectar la llave del catéter con alcohol 70% o clorhexidina 2% Quitar la tapa de los frascos de hemocultivo y desinfectar Colocarse nuevos guantes estériles Quitar el tapón del catéter y conectar la jeringa Extraer 1 ml de sangre y desechar Con una nueva jeringa extraer la sangre para el hemocultivo Invertir la botella para mezclar Desechar la aguja Limpiar la entrada del catéter

Interpretación de resultados Contaminación Corynebacterium spp. Bacillus sp Propionibacterium spp. Estafilococos coagulasa negativos (70-80%) o Micrococos spp. Enterococo spp (15-20%) Bacteremia real Staphylococcus aureus, S. pneumoniae , E. coli y otros miembros de la familia de Enterobacteriaceae , Pseudomonas aeruginosa , y Candida albicans. Otros: Streptococcus pyogenes , Streptococcus agalactiae , Listeria monocytogenes , Neisseria meningitidis , Neisseria gonorrhoeae , Haemophilus influenzae , miembros del grupo de Bacteroides fragilis , Candida sp. y Cryptococcus neoformans

Indicaciones

• (^) Evalúa el estado acido base del paciente y el intercambio gaseoso Sospecha de insuficiencia respiratoria
• (^) Estado círtico del paciente
• (^) Disminución inesperada de la saturación de O
• (^) Disnea Súbita, trastornos de conciencia
• (^) Disnea en trastornos metabólicos Sospecha de Alteraciones del equilibrio ácido base Principales parámetros gasométricos
• (^) pH
• (^) pO
• (^) pCo
• (^) Iones
• (^) Glucemia
• (^) HCO
• (^) Lactato Venosa Capilar Arterial

Procedimiento Arterial Lavado de manos Colocación de guantes Heparinizar una jeringa con 0.5ml Identificar el sitio a puncionar Desinfección del sitio Inserción de la aguja en 90° y arterial 45° Se extrae sangre Presión en el sitio de punción

Capilar Lavado de manos Colocación de guantes Suave masaje Desinfección del área a puncionar Sujeción del pie Punción con lanceta Presión para aumentar el flujo Recoger sangre por capilaridad

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