

Prepara tus exámenes y mejora tus resultados gracias a la gran cantidad de recursos disponibles en Docsity
Gana puntos ayudando a otros estudiantes o consíguelos activando un Plan Premium
Prepara tus exámenes
Prepara tus exámenes y mejora tus resultados gracias a la gran cantidad de recursos disponibles en Docsity
Prepara tus exámenes con los documentos que comparten otros estudiantes como tú en Docsity
Encuentra los documentos específicos para los exámenes de tu universidad
Estudia con lecciones y exámenes resueltos basados en los programas académicos de las mejores universidades
Responde a preguntas de exámenes reales y pon a prueba tu preparación
Consigue puntos base para descargar
Gana puntos ayudando a otros estudiantes o consíguelos activando un Plan Premium
Comunidad
Pide ayuda a la comunidad y resuelve tus dudas de estudio
Ebooks gratuitos
Descarga nuestras guías gratuitas sobre técnicas de estudio, métodos para controlar la ansiedad y consejos para la tesis preparadas por los tutores de Docsity
Asignatura: Tecniques Instrumentals, Profesor: Inmaculada Ponte, Carrera: Microbiologia, Universidad: UAB
Tipo: Apuntes
1 / 2
Esta página no es visible en la vista previa
¡No te pierdas las partes importantes!


Espectroscòpia: tècnica que permet estudiar la relació entre la radiació i la matèria i ens ajuda a determinar la composició de la mostra Radiació electromagnètica: mesura de les propietats moleculars basada en la interacció de les molècules amb la llum. Cromòfors: molècules amb capacitat per absorbir llum. Tenen color Espectrofotòmetre: instrument que mesura la llum absorbida per una mostra. Lent condensadora: lent que condensa el feix de llum que prové de la làmpara a fi d’evitar dispersions Lent colimadora: lent que homogenitza el deix de llum en una sola trajectòria paral·lela Monocromador: llum blanca que dispersa totes les longituds d’ona que la componen Espectrofotòmetre de doble feix: és semblant a l’espectrofotòmetre d’un feix però aquest té un divisor que separa el feix convertint-lo en 2 feixos de llum idèntics. Cada un d’aquests feixos va a parar en una cubeta diferent on una ens serveix de blanc i l’altre és on hi posem la mosta. Absorbància: quantitat de llum que absorbeix una mostra. Coeficient d’extinció molar: quantitat de llum absorbida per una solució 1M d’una determinada molècula en una cubeta d’1cm i a una λ determinada Radiació monocromàtica: llei definida per les radiacions d’una longitud d’ona determinada. Segons la qualitat de l’instrument utilitzarem una finestra més o menys estreta.
Excitació: absorció de radiació electromagnètica que passa d’estat fonamental a excitat. Desexcitació: transmissió des de l’estat excitat al fonamental. Fluorscència: propiedad que tienen algunas sustancias de absorber energía y luego emitir parte de esa energía en forma de luz. Fosforescència: fenómeno en el cual ciertas sustancias tienen la propiedad de absorber energía y almacenarla, para emitirla posteriormente en forma de radiación. Fluorímetre: dispositiu per a realitzar mesures espectroscòpiques d’emissió i excitació òptiques Espectrofluorímetre: serveix per a mesurar compostos que emeten un determinat tipus de radiació en ser excitats o irradiats per una llum amb una λ concreta. Intensitats de fluorescència: Intensitat de fluorescència real: numero de fotons emesos per unitats de temps Intensitat de fluorescència observada: numero de fotons que arriben al fotomultiplicador Filtre intern: disminució de la llum absorbida degut a la profunditat de la mostra. Filtre extern: absorció de la pròpia llum emesa per fluorescència. Canvi de la direcció de la llum Quenching: pèrdua de l’emissió de fluorescència degut a la intersecció del fluòfor amb una altre molècula Desactivació dinàmica: el quencher està en la dissolució i la desactivació es produeix a través de colisions entre el fluòfor i el quencher Desactivació estàtica: el quencher està assocuat al fluòfor formant un compleix i el complex passa a un estat fonamental sense emetre radiació FRET: mecanisme de transferència d’energia entre cromòfors
Cromatografia: mètode mitjançant el qual podem separar molècules en funció de l’afinitat que tinguins amb la fase mòbil o amb la fase estacionària Cromatografia convencional: Llit cromatogràfic: suport sòlid porós damunt del qual es diposita la fase estacionària Flux: cabal al qual la fase mòbil travessa la fase estacionària Elució: procés que va des del moment en que apliquem la mostra fins que recuperem l’últim solut Perfil d’elució: gràfic que permet veure quan i en quina quantitat surt cada solut. Tipus elucions: Isocràtica: mateix tampó durant tota la cromatografia Escalonada: variem la concentració de tampó de forma brusca Gradient continu: la [ ] de la fase mòbil augmenta uniformement amb el temps Cromatografia en gel filtració: distribució de les partícules segons la seva capacitat de penetrar o no al gel en funció de la seva mida i pes Coeficient de repartiment: Soluts>porus (no poden penetrar en fase estacionària i s’elueixen primers) soluts = porus (penetraran amb diferent probabilitat al gel) soluts < porus (penetraran tots en el gel i seran els últims a sortir) Cromatografia de bescanvi iònic: es basa en la càrrega de les proteïnes que volem separar, i en funció d’aquesta càrrega si és positiva o negativa. Bescanvi catiònic: la fase estacionària aniponica està adherida a un suport cromatogràfic sòlid i la fase sòlida és una dissolució de sal amb una determinada força iònica Bescanvi aniònic: igual que el catiònic però amb les càreegues invertides. La resina és positiva i les proteïnes que s’hi adhereixen negatives. Cromatografia hidrofòbica: es basa en el caràcter polar/apolar de les molècules a separar. La fase estacionària és un compost hidrofòbic i la fase mòbil és un dissolvent polar Cromatografia d’afinitat biològica:es basa en una interacció específica entre molècules i només s’utilitza en casos molt concrets Cromatografia de repartiment: Cr normal o de capa fina: fase estacionària és un dissolvent amb polaritat i la fase mòbil és un dissolvent molt apolar. La fase mòbil avança per “escapar ” de l’aigua. Cr en fase inversa: fase estacionària molt apolar i fase mòbil polar. Aquí l’aigua actua de fase mòbil RF: mobilitat relativa d’una molècula respecte el dissolvent. És un paràmetre característic de cada solut en un dissolvent concret i independent del temps que hagi durat una cromatografia o de la llargada del paper cromatogràfic
HPLC (cromatografia líquida d’alta resolució): tècnica analítica que ofereix una resolució molt més elevada que les convencionals tot i operar amb gels similars.
Coeficient de sedimentació: velocitat per unitat de camp gravitatori Velocitat de sedimentació: proporcional a la massa de la partícula, depèn molt del medi Ultracentrífuga analítica: sistema òptic per seguir el desplaçament de molècules i cèl·lules de centrifugació. És la única que permet calcular la veloctat de sedimentació de forma experimental Tipus de rotors Rotor flotant: les camises passen d’estat vertical a hortzontal (pelet al fons) Rotor angular: velocitats diferents per a cada tub (pellet no ben definit) Rotor vertical: les mostres s’estratifiquen de forma perpendicular Centrifugació en gradients (dis)continus: en el tub trobem diferents densitats pero no es troben formant un gradient. Centrifugació en gradients (dis)continus: en el fons del tub hi ha uns olució amb més densitat i a dalt una amb menys densitat Centrifugació isopínica: no tenim cap estratificació. Les particules denses han de baixar. S’utilitza per separar proteïnes/DNA/RNA i si es combina amb CsCl i bromur d’etidi ens serveix per la separació de diferents formes de DNA plasmídic Ultracentrifugació analítica: serveix per anar veient l’absorbància durant el procés de centrifugació. Permet la determinació del desplaçament del solut en funció del temps.
Rendiment: total fracció/total enzim inicial Factor de purificació: augmentar la concentració de la proteïna pura respecte a la proteïna que estem calculant Captura: purificació inicial de la molèculaobjectiu procedent de l’extracte cru o material clarificat Combinació de tècniques
CONDICIONS INICIALS TÈCNICA CONDICIONS FINALS Volum mostra limitat Gel filtració Mostra diluïda. Canvi de tampó Baixa força iònica Interacció iònica Alta força iònica i canvi de pH Alta força iònica Interacció hidrofòbica Baixa força iònica Condicions específiques d’unions
Cromatografia afinitat biològica Condicions específiques d’elució
Unió tècniques cromatogràfiques Intercanvi iònic interacció hi brofòbica GF C afinitat GF Interacció hidrofòbica intercanvi iònic PCR o GF
GF intercanvi iònic interacció hidrofòbica GF c afinitat GF
Suports no restrictius: molt laxes i poc concentrats, amb forats molt grans que permeten una gran mobilitat de les molècules Suports restrictius: més concentrat, dificulta la mobilitat de les molècules. En aquest cas, la mobilitat no depèn únicament de la densitat de càrrega sinó de la mida i forma de les molècules Mobilitat electroforètica relativa: és la diferència de distància recorreguda en funció de la distància total de la molècula que estudiem per la molècula patró. electroendosmosi: capacitat del suport pe carregar-se. Pot alterar el moviment de les partícules Electroenfoc: separem les proteïnes segons sigui el seu pI gràcies a un gradient de pH. Quan el pI=pH s’atura.
Western blot: identificació d’una proteïna mitjançant un anticòs Southern blot: identificació de DNA per complementarietat de bases. Necessita una prèvia electroforesi desnaturalitzant Northern blot: identificació de RNA per complementarietat de bases. Necessita una prèvia electroforesi desnaturalitzant South-western: identificació de les interaccions DNA-proteïna Microarrays: hibridació sobre portaobjectes de DNA, RNA o proteïnes que permeten mesurar l’espressió gènica. Hot start: modificació de la PCR convencional que redueix l’amplicficació de productes no específics