Docsity
Docsity

Prepara tus exámenes
Prepara tus exámenes

Prepara tus exámenes y mejora tus resultados gracias a la gran cantidad de recursos disponibles en Docsity


Consigue puntos base para descargar
Consigue puntos base para descargar

Gana puntos ayudando a otros estudiantes o consíguelos activando un Plan Premium


Orientación Universidad
Orientación Universidad


examen de prácticas, Ejercicios de Fisiología de las Plantas

Asignatura: Fisiología Vegetal, Profesor: , Carrera: Biología, Universidad: UAM

Tipo: Ejercicios

2012/2013

Subido el 09/05/2013

picara9
picara9 🇪🇸

3.9

(66)

3 documentos

1 / 1

Toggle sidebar

Esta página no es visible en la vista previa

¡No te pierdas las partes importantes!

bg1

Vista previa parcial del texto

¡Descarga examen de prácticas y más Ejercicios en PDF de Fisiología de las Plantas solo en Docsity!

EXAMEN DE PRÁCTICAS DE FISIOLOGÍA VEGETAL (Enero 2012) NA 0 113 GRUPO del año pasado: ....ccccccccononoss 1-- Tras escindir una patata en dos mitades, Utilizando una de ellas se ha establecido que su potencial hídrico es -0.9 MPa. ¿Qué ocurrirá con la otra mitad si la introducimos en una solución de sacarosa cuyo potencial osmótico es -0.9 MPa? A) La patata ganará peso B) La patata perderá peso C) La patata ni ganará ni perderá peso D) La patata se disolverá Justifica la respuesta en base al concepto de potencial hídrico. 2-- Partiendo de 2 gramos de hojas de espinaca se obtiene un extracto de pigmentos en un volumen final de 10 mL de etanol. Se toman 0,5 mL del extracto etanólico y se añade etanol puro hasta alcanzar un volumen final de 4 mL. Para determinar la concentración de clorofila a de esta última solución se mide la absorbancia a 665nm utilizando un espectrofotómetro y se obtiene un valor de 0,330. Calcula en g/g de hoja el contenido en ciorofila a de las hojas de espinaca. (Coeficiente de extinción (E) de la clorofila a en etanol a 685 nm = 76,07 mL.mgú'.cm”) 3-- ¿Qué compuestos actúan respectivamente como donador y aceptor de electrones en los ensayos de actividad del PSI! realizados en el laboratorio de prácticas? ¿Qué sucede cuando se añade DCMU a la mezcla de reacción? ¿Cómo se transforma una actividad expresada en mol de ferricianuro.mg clorofila"'.h! en otra expresada en jmol de O.mg clorofila*.h1? 5” 4-- Para determinar la actividad nitrato reductasa de plantas de maíz se realizan los siguientes pasos: - Se cortan y trocean 0.5 g de hojas de maiz y se introducen en un tubo de ensayo Se añaden 4 mL de una solución de incubación con exceso de nitratos Se infiltran las hojas tras tapar el tubo con un tapón de caucho Se incuba una hora a 30 *C Se añaden 4mL de agua hirviendo Del tubo anterior se toma 1 mL de muestra que se recoge en un nuevo tubo A ese nuevo tubo se añaden 4 mL de reactivo de nitritos Se lleva la solución a la cubeta de un espectrofotómetro Se mide la absorbancia a 540 nm (coef. extinción nitritos = 48.8 L mmol* cm'*) El dato de absorbancia obtenido es 0.2 .s.oocssoson. Calcula la actividad nitrato reductasa en micromoles de nitrito por gramo de hoja y por hora a partir de los datos anteriores. 5-- Se hacen ensayos de actividad a-amilasa con semillas de cebada y se obtienen los siguientes resultados Actividad a-amilasa Tratamiento (mg almidón degradado/mg peso seco.h) Semillas enteras en agua 5,964 Semillas enteras con cicloheximida 2,617 Medías semillas sin embrión en agua 2,225 Medias semillas sin embrión con a. giberélico 5,608 Medias semillas sin embrión con giberélico y cicloheximida 2,207 ¿Ejerce el ácido giberélico algún efecto sobre la actividad a-amilasa? ¿Qué tipo de información puede obtenerse del tratamiento con cicloheximida? Justifica las respuestas en base a los datos . experimentales,