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Guion practica microbiologia, Ejercicios de Biología

Asignatura: Pim Microbiologia y genetica, Profesor: Francisco Cazorla, Carrera: Biología, Universidad: UMA

Tipo: Ejercicios

2016/2017

Subido el 25/02/2017

lilwayne98
lilwayne98 🇪🇸

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P.I.M. Genética y Microbiología: Microbiología 1
Práctica 1. MEDIOS DE CULTIVO Y TÉCNICAS DE ESTERILIZACIÓN
Práctica 1a. Preparación de medios de cultivo bacteriológicos.
Material
- Granatario.
- Botes con los diferentes componentes del medio de cultivo.
- Probetas y vasos de precipitado.
- pHmetro digital.
- Agitador magnético (con placa calefactora) e imanes recubiertos de teflón.
- Matraces o tubos de ensayo.
- Algodón graso.
- Placas de Petri estériles.
- Los medios de cultivo a preparar son el caldo nutritivo y el agar nutritivo, cuya composición es
la siguiente:
Caldo nutritivo:
Peptona 10 g
Extracto de levadura 5 g
Cloruro sódico 5 g
Agua destilada 1000 ml
pH 7,2
Agar nutritivo:
Caldo nutritivo con 15 g/l de agar
Protocolo
- Calcular las cantidades necesarias de cada componente en función del volumen de medio a
preparar (preparar 100 ml).
- En una probeta, medir el volumen de agua destilada necesario. Añadir un poco de esta agua a
un matraz o vaso de precipitado (en función de si se va a preparar agar o caldo nutritivo,
respectivamente).
- Pesar cada uno de los componentes (excepto el agar) e irlos añadiendo al recipiente con el
agua. Añadir el resto del agua y agitar hasta disolución completa.
- Ajustar el pH del medio utilizando HCl 1N o NaOH 1N.
- En el caso del agar nutritivo, añadir el agar al caldo ya preparado y fundirlo por ebullición.
- Repartir los medios de la siguiente forma:
Caldo nutritivo: en tubos de ensayo (5 ml por tubo, con una jeringuilla).
Agar nutritivo para placa: dejarlo en el matraz y taparlo con algodón graso.
Agar nutritivo para tubos inclinados: en tubos de ensayo (5 ml por tubo, con una
jeringuilla). Antes de repartir este medio es muy importante asegurarse de que el agar está
totalmente fundido.
- Esterilizar los medios en el autoclave (121 °C, 15 min.). Los recipientes de rosca no deben
estar herméticamente cerrados (dejar un cuarto de rosca abierto).
- Una vez estériles, los tubos con agar nutritivo se dispondrán de forma inclinada para su
solidificación. El agar nutritivo esterilizado en un matraz se repartirá de forma aptica en
placas de Petri estériles que se dejarán solidificar en posición horizontal.
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Práctica 1. MEDIOS DE CULTIVO Y TÉCNICAS DE ESTERILIZACIÓN Práctica 1a. Preparación de medios de cultivo bacteriológicos. Material

  • Granatario.
  • Botes con los diferentes componentes del medio de cultivo.
  • Probetas y vasos de precipitado.
  • pHmetro digital.
  • Agitador magnético (con placa calefactora) e imanes recubiertos de teflón.
  • Matraces o tubos de ensayo.
  • Algodón graso.
  • Placas de Petri estériles.
  • Los medios de cultivo a preparar son el caldo nutritivo y el agar nutritivo, cuya composición es la siguiente: Caldo nutritivo: Peptona 10 g Extracto de levadura 5 g Cloruro sódico 5 g Agua destilada 1000 ml pH 7, Agar nutritivo: Caldo nutritivo con 15 g/l de agar Protocolo
  • Calcular las cantidades necesarias de cada componente en función del volumen de medio a preparar (preparar 100 ml).
  • En una probeta, medir el volumen de agua destilada necesario. Añadir un poco de esta agua a un matraz o vaso de precipitado (en función de si se va a preparar agar o caldo nutritivo, respectivamente).
  • Pesar cada uno de los componentes (excepto el agar) e irlos añadiendo al recipiente con el agua. Añadir el resto del agua y agitar hasta disolución completa.
  • Ajustar el pH del medio utilizando HCl 1N o NaOH 1N.
  • En el caso del agar nutritivo, añadir el agar al caldo ya preparado y fundirlo por ebullición.
  • Repartir los medios de la siguiente forma: Caldo nutritivo: en tubos de ensayo (5 ml por tubo, con una jeringuilla). Agar nutritivo para placa: dejarlo en el matraz y taparlo con algodón graso. Agar nutritivo para tubos inclinados: en tubos de ensayo (5 ml por tubo, con una jeringuilla). Antes de repartir este medio es muy importante asegurarse de que el agar está totalmente fundido.
  • Esterilizar los medios en el autoclave (121 °C, 15 min.). Los recipientes de rosca no deben estar herméticamente cerrados (dejar un cuarto de rosca abierto).
  • Una vez estériles, los tubos con agar nutritivo se dispondrán de forma inclinada para su solidificación. El agar nutritivo esterilizado en un matraz se repartirá de forma aséptica en placas de Petri estériles que se dejarán solidificar en posición horizontal.

Práctica 1b. Métodos de esterilización en el laboratorio de Microbiología. Objetivo Conocer los métodos de esterilización de uso más común en un laboratorio de Microbiología y sus aplicaciones. Protocolo a) Esterilización de material de vidrio (pipetas y placas de Petri)

  • Introducir las pipetas en pipeteros siguiendo los siguientes pasos: 1) introducir un trozo de algodón en el fondo del pipetero, 2) meter las pipetas orientadas (con las puntas hacia abajo) asegurándose de que estén bien limpias y secas, y 3) cerrar el pipetero de forma que los agujeros de la tapa queden abiertos.
  • Envolver las placas de Petri en papel de confitero o papel de filtro fino (el material ha de estar limpio y seco).
  • Meter el material a esterilizar en el horno Pasteur regulado a 170 °C durante 2 horas (el tiempo efectivo de esterilización será de 90 min). Los pipeteros deben cerrarse (cerrar los agujeros de la tapa) inmediatamente después de sacarlos del horno para evitar su posterior contaminación. b) Esterilización de medios de cultivo
  • Pegar un trozo de cinta indicadora de esterilización en alguno de los recipientes con medios de cultivo a esterilizar (preparados en la práctica 1a).
  • Introducir los recipientes con el medio de cultivo en el autoclave regulando la temperatura a 121 °C y el tiempo de esterilización a 15 min (tiempo real de esterilización). Instrucciones para el manejo del autoclave: a) Revisar el nivel del agua (debe cubrir la resistencia). En caso necesario añadir agua destilada o descalcificada. b) Introducir el material a esterilizar debidamente preparado (según se ha descrito anteriormente). c) Cerrar la puerta del autoclave y conectarlo. d) Ajustar la temperatura y el tiempo de esterilización adecuados (normalmente 121 °C durante 15 min). Si el autoclave tiene una llave de purga manual, ésta debe cerrarse en cuanto empiece a observarse la salida de vapor de agua, actualmente todos los autoclaves tienen sistema de purga automático. e) Transcurrido el tiempo de esterilización programado la presión comenzará a bajar de forma automática (en los autoclaves actuales) hasta alcanzarse en el interior del autoclave valores de presión atmosféricos, en este momento puede abrirse el autoclave. f) Antes de abrir el autoclave es MUY IMPORTANTE que nos aseguremos de que la presión ha bajado totalmente. c) Esterilización de material plástico no termoresistente (placas de Petri de poliestireno)
  • Colocar las placas de Petri abiertas en el interior de la cabina de esterilización, debajo de la lámpara germicida (luz ultravioleta).
  • Encender la lámpara y dejar actuar durante 2 horas.
  • Apagar la lámpara y cerrar las placas antes de sacarlas de la cabina.