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antibiograma, Notas de estudo de Bioquímica

Bacteriologia, antibiograma

Tipologia: Notas de estudo

Antes de 2010

Compartilhado em 29/10/2009

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shirley-weiss-11 🇧🇷

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Cefar Diagnóstica Ltda.
Pesquisa e Desenvolvimento de Produtos para
Diagnósticos
Av: Eng Alberto de Zagottis 635 - Jurubatuba
São Paulo - SP - CEP. 04766-050
C.N.P.J. 44.562.700/0001-45 I. Est. 110.411.919.112
Fone: 0XX11 5521.9244 Fax 0XX11 5548.5132
Discos para Antibiograma, Discos para
Identificação Presuntiva e Taxonômica de
Bactérias, Suplementos e Misturas Seletivas ,
Meios de Cultivo Hidratados, Bactérias
Padrão, Bioindicadores e Laminocultivos.
ANTIBIOGRAMA PASSO A PASSO
Teste de Sensibilidade por disco difusão
(Metodologia de Kirby-Bauer)
Etapa 1: Preparação dos Substratos
Os discos a serem utilizados devem ter passado por controle de qualidade prévio
quanto a sua eficácia para evitar quaisquer desvios na leitura e conseqüente erro ao
reportar o status de sensibilidade de um microrganismo.
Quanto ao meio de cultura, observar seu estado aparente (descolamento da placa,
espessura 4mm, possíveis contaminações etc.) caso esteja pré-pronto. Ao se optar pela
fabricação do meio de cultivo in house, deve-se determinar qual o meio mais adequado
para o crescimento do microrganismo a ser avaliado. Para testes com microrganismos de
crescimento rápido (p. ex. E. coli e Staphylococcus) usar meio de Mueller Hinton não
suplementado. Para testes com microrganismos nutricionalmente exigentes (Haemophilus
sp., Neisseria sp., pneumococos), usar meio de Mueller Hinton suplementado com sangue
e/ou nutrientes específicos para o desenvolvimento do microrganismo.
Em todos os casos atentar para a validade dos produtos utilizados.
Etapa 2: Preparação do Inóculo
O inóculo deverá ser preparado a partir de colônias isoladas e representativas do
microrganismo, presentes em placa de isolamento primário.
Para tanto, suspender em salina estéril ou caldo de cultivo a colônia a ser testada
de forma a obter uma suspensão com turvação equivalente a 0,5 da escala de McFarlland
(1,5 x 108 UFC/ml). Essa turvação pode ser obtida por:
— pré-incubação do inóculo (método do crescimento), onde a colônia isolada e
suspendida em meio de cultura e seu crescimento e monitorado até que atinja a
concentração desejada, ou por
— inoculação direta (método da suspensão direta), onde se suspende um número
suficiente de colônias para se atingir a concentração desejada.
A confirmação da concentração do inóculo pode ser feita através do método de
comparação visual com padrão de turvação correspondente a 0,5 da escala de McFarlland
ou pelo método turbidimétrico, com leitura do inóculo a 625nm. A D.O. (Densidade óptica –
Espectrofotômetro ) desejada é de 0,08 à 0,10.
Etapa 3: Inoculação na Placa
Imergir um swab estéril na suspensão bacteriana e, retirando o excesso de inóculo
através da compressão do swab nas paredes do tubo, semear a placa uniformemente em
estrias. A placa é uniformemente semeada por rotações a cada 60 graus.
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Pesquisa e Desenvolvimento de Produtos para Diagnósticos Av: Eng Alberto de Zagottis 635 - Jurubatuba São Paulo - SP - CEP. 04766- C.N.P.J. 44.562.700/0001-45 I. Est. 110.411.919. Fone: 0XX11 5521.9244 Fax 0XX11 5548.

Discos para Antibiograma, Discos para Identificação Presuntiva e Taxonômica de Bactérias, Suplementos e Misturas Seletivas , Meios de Cultivo Hidratados , Bactérias Padrão, Bioindicadores e Laminocultivos.

ANTIBIOGRAMA PASSO A PASSO

Teste de Sensibilidade por disco difusão

(Metodologia de Kirby-Bauer)

Etapa 1: Preparação dos Substratos

Os discos a serem utilizados devem ter passado por controle de qualidade prévio quanto a sua eficácia para evitar quaisquer desvios na leitura e conseqüente erro ao reportar o status de sensibilidade de um microrganismo. Quanto ao meio de cultura, observar seu estado aparente (descolamento da placa, espessura ≥ 4mm, possíveis contaminações etc.) caso esteja pré-pronto. Ao se optar pela fabricação do meio de cultivo in house , deve-se determinar qual o meio mais adequado para o crescimento do microrganismo a ser avaliado. Para testes com microrganismos de crescimento rápido (p. ex. E. coli e Staphylococcus ) usar meio de Mueller Hinton não suplementado. Para testes com microrganismos nutricionalmente exigentes ( Haemophilus sp., Neisseria sp., pneumococos), usar meio de Mueller Hinton suplementado com sangue e/ou nutrientes específicos para o desenvolvimento do microrganismo. Em todos os casos atentar para a validade dos produtos utilizados.

Etapa 2: Preparação do Inóculo

O inóculo deverá ser preparado a partir de colônias isoladas e representativas do microrganismo, presentes em placa de isolamento primário. Para tanto, suspender em salina estéril ou caldo de cultivo a colônia a ser testada de forma a obter uma suspensão com turvação equivalente a 0,5 da escala de McFarlland (1,5 x 10^8 UFC/ml). Essa turvação pode ser obtida por:

— pré-incubação do inóculo (método do crescimento), onde a colônia isolada e suspendida em meio de cultura e seu crescimento e monitorado até que atinja a concentração desejada, ou por — inoculação direta (método da suspensão direta), onde se suspende um número suficiente de colônias para se atingir a concentração desejada.

A confirmação da concentração do inóculo pode ser feita através do método de comparação visual com padrão de turvação correspondente a 0,5 da escala de McFarlland ou pelo método turbidimétrico, com leitura do inóculo a 625nm. A D.O. (Densidade óptica – Espectrofotômetro ) desejada é de 0,08 à 0,10.

Etapa 3: Inoculação na Placa

Imergir um swab estéril na suspensão bacteriana e, retirando o excesso de inóculo através da compressão do swab nas paredes do tubo, semear a placa uniformemente em estrias. A placa é uniformemente semeada por rotações a cada 60 graus.

Pesquisa e Desenvolvimento de Produtos para Diagnósticos Av: Eng Alberto de Zagottis 635 - Jurubatuba São Paulo - SP - CEP. 04766- C.N.P.J. 44.562.700/0001-45 I. Est. 110.411.919. Fone: 0XX11 5521.9244 Fax 0XX11 5548.

Discos para Antibiograma, Discos para Identificação Presuntiva e Taxonômica de Bactérias, Suplementos e Misturas Seletivas , Meios de Cultivo Hidratados , Bactérias Padrão, Bioindicadores e Laminocultivos.

Etapa 4: Aplicação dos discos de sensibilidade

Os antibióticos a serem utilizados no teste de sensibilidade são definidos um laboratório de referência (p. ex. Clinical and Laboratory Standards Institute – CLSI) através de documentos periodicamente atualizados (p.ex. M100-S16/2006 – CLSI). No Brasil o padrão utilizado é o estabelecido pelo CLSI ou pelo FDA ( Food and Drug Administration ). Os discos poderão ser utilizados de forma individual (Sensifar série básica e complementar, Sensifar-vet) ou em sistema multidisco (Multifar-15 e Multifar-24).

  • Distribuir com o auxílio de uma pinça estéril os discos na superfície do ágar guardando distância aproximada de 24mm de centro a centro.
  • Não remover ou reposicionar os discos após fixação no ágar
  • Posicionar no máximo 12 discos (placas de 150mm) ou 5 discos (placas de 100mm) por placa de teste.

Etapa 5: Incubação das Placas

Após 15 minutos à temperatura ambiente, incubar as placas, invertidas, a 35ºC por 16-18 h.

Condições diferenciadas de incubação:

  • Staphylococcus aureus : 24 h ( Vancomicina e Oxacilina )
  • Haemophilus sp: 20-24 h a 5% CO 2
  • Streptococcus pneumoniae : 18-24 h a 5% CO 2

Etapa 6: Leitura da Zona de Inbição

Após o período de incubação, checar a característica do crescimento e o padrão das zonas de inibição ao redor dos discos. Usando um paquímetro, ou halômetro Cefar, medir as zonas de inibição, em milímetros, incluindo o diâmetro do disco. Observações:

  • Discos com crescimento adjacente às bordas devem ser medidos a partir do crescimento externo.
  • Qualquer crescimento dentro dos halos de inibição deve ser subcultivado, reidentificado e retestado.
  • No caso de bactérias hemolíticas, fazer a leitura da zona de crescimento e não da zona de hemólise.
  • No caso de antibiograma para Proteus sp., ignorar o véu formado na zona de inibição e ler normalmente seu diâmetro.