

Prepara tus exámenes y mejora tus resultados gracias a la gran cantidad de recursos disponibles en Docsity
Gana puntos ayudando a otros estudiantes o consíguelos activando un Plan Premium
Prepara tus exámenes
Prepara tus exámenes y mejora tus resultados gracias a la gran cantidad de recursos disponibles en Docsity
Prepara tus exámenes con los documentos que comparten otros estudiantes como tú en Docsity
Encuentra los documentos específicos para los exámenes de tu universidad
Estudia con lecciones y exámenes resueltos basados en los programas académicos de las mejores universidades
Responde a preguntas de exámenes reales y pon a prueba tu preparación
Consigue puntos base para descargar
Gana puntos ayudando a otros estudiantes o consíguelos activando un Plan Premium
Comunidad
Pide ayuda a la comunidad y resuelve tus dudas de estudio
Ebooks gratuitos
Descarga nuestras guías gratuitas sobre técnicas de estudio, métodos para controlar la ansiedad y consejos para la tesis preparadas por los tutores de Docsity
problemas de la asignatura de biologia celular
Tipo: Ejercicios
1 / 3
Esta página no es visible en la vista previa
¡No te pierdas las partes importantes!


Quina seqüència d'aminoàcids del domini de la fibronectina es reconeguda pel receptor? La fibronectina es una glicoproteina que es troba es la matriu extracel·lular i uneix cèl·lules a superfícies. Un dels dominis s’uneix als receptors de fibronoectina produint aquesta adhesió.
Experiment 1: Separem la seqüència de 108 aminoàcids en pèptids sintètics més petits. Cada pèptid s’enganxa a la superfície de la placa de cultiu establint ponts disulfur amb proteïnes que es troben a la placa. En els resultats veiem quina concentració de pèptid necessitem perquè s’enganxin com a mínim el 50% de les cèl·lules. Per tant, el pèptid més eficaç és el que menys concentració necessitem per una bona adhesió (pèptid 1)
Experiment 2. La placa de cultiu es cobreix amb fibronectina i després s’afegeixen cèl·lules i una sèrie de pèptids. Concloem que com mes bona adhesió presenti el pèptid, menys cèl·lules s’enganxaran a la placa, perquè la cèl·lula s’enganxarà al pèptid.
a) L’adhesió vol dir el mateix en els dos assaigs? No, en el primer assaig com més actiu sigui el pèptid mes adhesió presentarà perquè estem tenint em compte que l’adhesió a la placa es fa pels pèptids. En canvi en el segon com més actiu sigui el pèptid menys adhesió veurem en els resultats perquè algunes cèl·lules s’hauran unit al pèptids i no a la fibronectina de la superfície de la placa.
b) Quina seqüència de la proteïna és reconeguda pels receptors? La seqüencia més activa és la RGD ja que en l’experiment 1 els pèptids que no presenten aquesta seqüencia (el 3,5 i 9) necessiten una concentració molt elevada perquè s’uneixin el 50% de les cèl·lules. A més a més en l’experiment 2 veiem que els pèptids que conten la RGD presenten un percentatge inferior d’adhesió a la fibronectina, en canvi els que no tenen aquesta seqüencia presenten mes adhesió a la fibronectina.
c) Com assegurem que el receptor s’uneix a RGD? Com aïllem el receptor de la fibronectina? Agafem una placa de cultiu i la recobrim de proteïnes que continguin enllaços covalents amb un pèptids que inclogui la regió RGD. Introduïm cèl·lules i esperem a que s’uneixin a la placa. Després afegim detergent per trencar la membrana plasmàtica. Netegem la placa i tant sols tindrem enganxats a aquesta els receptors ja que la resta de proteïnes després de la neteja hauran desaparegut.
PROBLEMA 6 Volem saber si les unions gap estan a les cèl·lules embrionàries abans i després de la compactació (estadi de 8 cèl·lules a les 48h) Els embrions de ratolí arriben a ser 2 cèl·lules al cap d’unes 24h després de a fecundació i 8 cèl·lules 48h més tard. En l’estadi de 8 cèl3lules hi ha una compactació (esfera totalment segellada). Per estudiar-ho (en vermell) agafem micropipetes de vidre i injectem dins els blastòmers HRP (40.000Da) o fluoresceïna (330Da). [El fluorocrom l’observem de color groc i HRP el veiem quan incubem cèl·lules amb l’enzim i apliquem el substrat indicat.] Injectem les dos substancies en els dos estadis. Obtenim resultats diferents, que poden ser causats per la presència de ponts citoplasmàtics entre les 2 cèl·lules filles. Les unions gap son el tipus d’unió entre cèl·lules mes freqüent en els teixit animals. Aquesta unió es forma a partir de la coincidència dels connexons de dues cèl·lules adjacents. Els connexions són canals proteics formats per connexines. La regulació de l’obertura o tancament d’aquests canals es fa a partir de la separació entre connexines. Quan els connexions formen aquests canals, els citosols de les dues cèl·lules adjacents queden connectats de manera que es permet el pas de substàncies o molècules petites duna cèl·lula a una altra.
a) Perquè les substàncies passen duna cèl·lula a l’altra en les cèl·lules primerenques i no en les tardanes? Perquè quan les cèl·lules son primerenques es troben molt unides i trobem entre elles unions que permeten la comunicació entre els citoplasmes de les dues, possiblement ponts citoplasmàtics. En canvi,
quan ja son tardanes, la separació entre elles augmenta ja que s’hauran de dividir i per tant no s’estableixen aquestes unions.
b) Perquè la fluorescina passa a les altres cèl·lules embrionàries quan nomes l’has injectat en una i en canvi amb HRP no passa a les cèl·lules adjacents sinó que es queda a la que l’has injectat? Perquè entre les cèl·lules embrionàries a l’estadi de 8 cèl·lules compactades trobem unions gap. Sabent que la fluorescina te una massa atòmica de 330 Da, i la HRP te una massa atòmica molt més gran, de 40 000 Da i que les unions gap nomes permeten el pas de substàncies i molècules petites fins a 1000 Da, podem afirmar que la fluorescina ha passat perquè és més petita i en canvi la HRP no ja que es massa gran. Per això la HRP nomes es queda a la cèl·lula que s’ha injectat.
c) Quan es formen les unions gap entre blastòmers? Les unions gap es formen després de la compactació de l’estadi de 8 cèl·lules perquè si hi hagués unions gap abans de la compactació la fluorescina la veuríem en totes les cèl·lules encara que només s’hagués injectat en una i també veuríem nomes una cèl·lula amb HRP enlloc de dues perquè si la unió fos per gap no hauria pogut passar. A més a més els resultats abans i després de la compactació serien els mateixos si les unions gap es formessin abans de compactar-se les cèl·lules.
d) En quins estadis podríem fer passar un corrent elèctric per la micropipeta de la HRP i notaríem els canvis de voltatge a la micropipeta amb fluorescina? Detectaríem acoblament elèctric en els estadis de 2 cèl·lules primerenques i 8 cèl·lules compactades. En el primer perquè trobem ponts citoplasmàtics i en el segon perquè hi ha unions gap. Així ho podem assegurar perquè les cèl·lules en els altres estadis no estan connectades entre sí ni per ponts citoplasmàtics ni per unions gap, perquè de ser així detectaríem la fluorescina en totes les cèl·lules dels dos estadis i la HRP també la trobaríem en totes les cèl·lules del estadi 2 cèl·lules tardanes.
PROBLEMA 7 Quins factors necessitem per la translocació de una proteïna a traves de la membrana del reticle? Fem un experiment amb llevats en un medi sense cèl·lules (in vitro). En el sistema in vitro posem mRNA que codifica x una proteïna secretora, metionina (que és el primer aminoàcid que s’incorpora durant la síntesi de proteïnes) i diferents preparacions (els continguts de la taula). Després tractem les mostres del sistema amb proteasa (que trenca els enllaços peptídics), precipiten les proteïnes i les desnaturalitzem. Les proteïnes intactes (són translocades) (1,4,5) i les digerides (no són translocades) (2,3,6,7). Els microsomes son vesícules que hem obtingut de la fragmentació del RE. [Els llevats fan translocació postraduccional.]
a) Perquè hem d’afegir proteasa i trencar els enllaços de les proteïnes abans d’analitzar-les? Afegim la proteasa per tal de saber en quines preparacions s’han traslocat les proteïnes i en quines no.
b) Que volen dir bandes discretes o difoses? Les bandes discretes que trobem en les preparacions 1,4,5 representen com diu l’enunciat que les proteïnes han quedat intactes, es a dir, la proteasa no les ha digerit, així doncs podem afirmar que s’han translocat i han quedat dins del microsomes evitant l’efecte de la proteasa. En canvi les bandes difoses que representen les preparacions 2,3,6,7 sabem que les proteïnes s’han digerit per la proteasa i per tant no s’han pogut translocar i han quedat exposades a l’efecte de la proteasa.
carril 5. Com que estem tractant amb llevats i fan translocació postraduccional, a mesura que es transloca la proteïna, els ADP s’hi enganxen i la van estirant. El pes de la proteïna amb l’ADP és 45, tenint en compte tot això, podem afirmar que a la mostra 5, com que hem deixat més temps d’incubació ha donat temps a que l’ADP i la proteïna se separessin, justament per això trobem les dues bandes: la de l’ADP, amb un pes