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Asignatura: Biosíntesis de Macromoléculas, Profesor: Miguel Angel Fernández Moreno, Carrera: Bioquímica, Universidad: UAM
Tipo: Transcripciones
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Supuestos prácticos de transcripción 1
CUESTIONES
Experimento de co-transfección
a) El DNA que se transfecta en ausencia de factor X es el vector quimera, el cual presenta las secuencias del promotor del gen neurogranina (cuyo control queremos estudiar) fusionadas con el gen testigo luciferasa, de forma que podamos asociar la expresión a ciertos niveles de actividad luciferasa. Es necesario un control de transfección tanto en el mimso plasmido como en plasmidos distintos, ya que la actividad β-gal nos permite ver cual ha ido la efectividad de la transcripción. Por ello, se debe hacer la relacion β-gal/luciferasa para ver si la transfección ha sido correcta o no.
b) El valor de actividad Luciferasa refleja unos valores muy bajos (en torno a 700) que podrían corresponderse con el nivel de expresión basal por parte del promotor cuando este no es inducido. La co-transfección en ausencia de factor X se introduce en el experimento como control negativo, para tomar como referencia estos valores de luciferasa como los propios de una expresión a nivel basal, ante un promotor no inducido, y así además confirmar que el factor X es inductor de la transcripción.
c) Sí, los resultados obtenidos sugieren que al menos hay dos regiones esenciales, o que contribuyan a la inducción de la transcripción, ya que mutaciones en estas regiones suponen niveles de expresión mucho más bajos a los registrados cuando el factor X se expresa completo (WT). Estas regiones, serían en primer lugar, el extremo N-terminal, ya que al suprimir los primeros 75 aminoácidos la expresión baja hasta unos niveles prácticamente basales. En segundo, tendríamos la región C-terminal pero no por su extremo (puesto que a supresión de los primeros 50 aminoácidos no supone apenas diferencia con el WT), sino a partir del aminoácido 50 empezando por este extremo, ya que al eliminar los primero 100 aminoácidos la expresión vuelve de nuevo a niveles basales. Por último, el hecho de que la versión mutante 75-300 del factor X tenga una expresión menor que la salvaje pero mayor que la basal, nos sugiere que estas dos regiones antes mencionadas son esenciales y necesarias, y que su presencia determina la expresión, pero que además, la región que precede al aminoácido 350, aunque no es necesaria, sí ha de potenciarla, pues su ausencia, no impide la expresión pero sí la disminuye bastante.
En relación al retardo en gel:
d) En el carril 1 incubamos con la sonda radiactiva un extracto de proteínas de células en las que no se ha transfectado la proteína de fusión.
e) En el carril 2 se transfectado en ausencia del factor X, el cual es la proteína cuya unión al DNA queremos estudiar por lo que sin esta, no hay nada que se una al DNA y por tanto no hay retardo en el gel.
f) Este punto nos aporta un control negativo en cuanto a la unión proteína-DNA, asegurándonos que si observamos retraso en gel ha de deberse a la transfección de esta y no a falsos positivos.
g) En los carriles 5, 9, 11, y 13 se ha aplicado un exceso de oligo frío frente al oligo de interés marcado radiactivamente. Este oligo es una mezcla de distintas secuencias, lo
que nos permite distinguir si la unión de proteína-DNA es inespecífica (en cuyo caso aparecería retardo en sus carriles debido a la interacción) o especifica, como en este caso, ya que la ausencia de retardo supone que el factor X se une solo al oligo concreto que contiene la secuencia de interés , y no a cualquiera.
h) El carril 6 contiene la versión mutante N-75 del factor X a la que se le ha suprimido el extremo N-terminal en 75 aminoácidos. El hecho de que no se aprecie retardo, supone que no ha habido interacción proteína-DNA, y por tanto, nos sugiere que la región que falta en el factor X, participaba en la unión de este al DNA, que probablemente consistía en sí misma en el dominio de unión a DNA.
i) El hecho de que los complejos se encuentren cada vez más cerca de la sonda se debe a que el tamaño de estos va siendo cada vez menor (excluimos el N-75 pues no muestra retardo ninguno): 1º 450 aminoácidos 2º 400 aminoácidos 3º 350 aminoácidos 4º 175 aminoácidos
Así pues, cuanto más pequeño es el complejo, mayor distancia será capaz de recorrer en el gel, lo cual explica que se acerquen a la sonda progresivamente según su tamaño.