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eletroforese CELM, Notas de estudo de Bioquímica

eletroforese CELM

Tipologia: Notas de estudo

Antes de 2010

Compartilhado em 29/08/2010

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estude-muito-12 🇧🇷

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bg1
CELMGEL
FILME DE AGAROSE GERAL
Filmes de agarose para separação eletroforética de proteínas e lipoproteínas.
Somente para uso "in vitro".
Artigo N
o
1801 10 x 10 Determinações
I. PROTEINOGRAMA
INTRODUÇÃO
A análise do quadro protéico-plasmático é importante, pois se podem diagnosticar várias
alterações patológicas. Entre os métodos de qualificação e quantificação dessas proteínas
destaca-se a eletroforese, que se tem tornado um importante meio auxiliar de diagnóstico na
maioria dos laboratórios clínicos. A eletroforese permite uma avaliação aproximada das
concentrações de várias proteínas importantes, cujas alterações, seja de regulação de suas
sínteses, ou de seu maior consumo, podem refletir nas suas mobilidades eletroforéticas ou
nas suas concentrações.
AMOSTRA
Usar soro fresco livre de hemólise por até 3 dias mantidos em geladeira (2 a 8
o
C). O
congelamento é desaconselhável.
PROCEDIMENTO
1) Colocar 80 mL de * tampão tris pH 9,5 gelado (2 a 8
o
C) , na cuba.
2) Aplicar 0,4 µ
µµ
µL de cada soro no filme de agarose.
3) Colocar o filme de agarose no porta-filme coincidindo os pólos negativos do filme com a
cuba.
4) Colocar o porta-filme na cuba e tampá-la. Deixar por 20 minutos a 100 volts.
5) Retirar a tampa da cuba e o porta-filme, colocando-a sobre uma folha de papel de filtro
para eliminar o excesso de tampão das bordas do filme.
6) Retirar o filme do porta-filme.
7) Mergulhar o filme em 200 mL de corante por 5 minutos sem agitação.
8) Retirar o filme do corante e colocar em 200 mL de descorante por 5 minutos.
9) Retirar o excesso de descorante do filme e colocá-lo a 60
o
C (55
o
C a 65
o
C), até que o
mesmo fique completamente seco. Sugerimos o uso de secador de cabelos com
aquecimento.
10) Colocar o filme de agarose no descorante até o fundo ficar transparente. Se necessário,
trocar o descorante.
11) Secar a 60
o
C (55
o
C a 65
o
C) novamente.
12) Ler no scanner ou no densitômetro à 520 nm. Pode-se ainda fazer a eluição das bandas
com NaOH 2% (2 g NaOH em 100 mL H
2
O): recortar cada fração e colocar em 2 mL do
eluente. Após a dissolução, ler a absorbância em 580 nm.
* Não reutilizar o tampão
Materiais necessários não fornecidos:
Corante - Negro de Amido (Amido Black 10-B - art. 1810 - CELM) 0,1% em ácido acético a
5%.
Descorante - ácido acético a 5%.
Revisão: P&D – Maio/2003
VALORES DE REFERÊNCIA
%
g/dL
Albumina 53,70 a 62,9 3,60 a 4,20
Alfa - 1 3,30 a 5,20 0,20 a 0,40
Alfa - 2 7,20 a 11,20 0,50 a 0,80
Beta 10,40 a 14,70 0,70 a 1,00
Gama 10,80 a 19,70 0,70 a 1,40
Recomenda-se que cada laboratório estabeleça seus próprios valores de referência.
ILUSTRAÇÃO DA SEPARAÇÃO DE PROTEÍNAS PLASMÁTICAS
Conc. 6.14
Nome: Paciente Frações %
1
2
3
4
5
6
0,5
57,8
3,5
7,9
13,6
16,5
0,031
3,552
0,217
0,487
0,838
1,015
Gráfico obtido no aparelho DS-35
Gráfico obtido no sistema SE-250
Observações
1. Em mulheres usuárias de contraceptivos orais e gestantes, os valores de albumina e gama-globulina
apresentam-se ligeiramente inferiores aos intervalos apresentados. Pela mesma razão, as frações alfa-1-
globulina, alfa-2-globulina e beta-globulina apresentam valores ligeiramente superiores aos i ntervalos citados
(vide referência bibliográfica 2 no verso desta página).
CELM - Cia. Equipadora de Laboratórios Modernos
Al. Amazonas, 764 - Alphaville - Barueri - SP - CEP 06454-
070
Fone: (55XX11) 41911647 - Fax: (55XX11) 4195-5916
CNPJ 61.086.823/0001-76 - IND. BRAS.
Farm. Resp.: Douglas Pedrassa CRF - SP - 21.172
REG. MS 10125310089
SACC (Serviço de Atendimento ao Cliente CELM): 0800 553 5 52
Visite nossa home page www.celm.com.br
pf2

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CELMGEL

FILME DE AGAROSE GERAL Filmes de agarose para separação eletroforética de proteínas e lipoproteínas.Somente para uso "in vitro".Artigo N

o^1801

10 x 10 Determinações

I. PROTEINOGRAMAINTRODUÇÃO A análise do quadro protéico-plasmático é importante, pois se podem diagnosticar váriasalterações patológicas. Entre os métodos de qualificação e quantificação dessas proteínasdestaca-se a eletroforese, que se tem tornado um importante meio auxiliar de diagnóstico namaioria dos laboratórios clínicos. A eletroforese permite uma avaliação aproximada dasconcentrações de várias proteínas importantes, cujas alterações, seja de regulação de suassínteses, ou de seu maior consumo, podem refletir nas suas mobilidades eletroforéticas ounas suas concentrações. AMOSTRA Usar soro fresco livre de hemólise por até 3 dias mantidos em geladeira (2 a 8

oC

). O

congelamento é desaconselhável. PROCEDIMENTO 1)

Colocar 80 mL de * tampão tris pH 9,5 gelado (2 a 8

o^ C) , na cuba

Aplicar

μμμμ

L^

de cada soro no filme de agarose.

Colocar o filme de agarose no porta-filme coincidindo os pólos negativos do filme com acuba.

Colocar o porta-filme na cuba e tampá-la

. Deixar por 20 minutos a 100 volts

Retirar a tampa da cuba e o porta-filme, colocando-a sobre uma folha de papel de filtropara eliminar o excesso de tampão das bordas do filme.

Retirar o filme do porta-filme.

Mergulhar o filme em 200 mL de corante por 5 minutos sem agitação.

Retirar o filme do corante e colocar em 200 mL de descorante por 5 minutos.

Retirar o excesso de descorante do filme e colocá-lo a 60

oC (

o^ C a 65

o^ C), até que o

mesmo

fique

completamente

seco.

Sugerimos

o

uso

de

secador

de

cabelos

com

aquecimento.

  1. Colocar o filme de agarose no descorante até o fundo ficar transparente. Se necessário,

trocar o descorante.

  1. Secar a 60

oC (

oC a 65

oC) novamente.

Ler no scanner ou no densitômetro à 520 nm. Pode-se ainda fazer a eluição das bandascom NaOH 2% (2 g NaOH em 100 mL H

O): recortar cada fração e colocar em 2 mL do 2

eluente. Após a dissolução, ler a absorbância em 580 nm.

* Não reutilizar o tampãoMateriais necessários não fornecidos:Corante

  • Negro de Amido (Amido Black 10-B - art. 1810 - CELM) 0,1% em ácido acético a

5%. Descorante

  • ácido acético a 5%.

Revisão: P&D – Maio/

VALORES DE REFERÊNCIA

g/dL

Albumina

53,70 a 62,

3,60 a 4,

Alfa - 1

3,30 a 5,

0,20 a 0,

Alfa - 2

7,20 a 11,

0,50 a 0,

Beta

10,40 a 14,

0,70 a 1,

Gama

10,80 a 19,

0,70 a 1,

Recomenda-se que cada laboratório estabeleça seus próprios valores de referência. ILUSTRAÇÃO DA SEPARAÇÃO DE PROTEÍNAS PLASMÁTICAS

Conc.

Nome: Paciente

Frações

%

123456

0,557,8 3,57,913,6 16,

0,0313,5520,2170,4870,8381,

Gráfico obtido no aparelho DS-

Gráfico obtido no sistema SE-

Observações 1.^

Em mulheres usuárias de contraceptivos orais e gestantes, os valores de albumina e gama-globulinaapresentam-se ligeiramente inferiores aos intervalos apresentados. Pela mesma razão, as frações alfa-1-globulina, alfa-2-globulina e beta-globulina apresentam valores ligeiramente superiores aos intervalos citados(vide referência bibliográfica 2 no verso desta página).

CELM - Cia. Equipadora de Laboratórios Modernos Al. Amazonas, 764 - Alphaville - Barueri - SP - CEP 06454-

070

Fone: (55XX11) 41911647 - Fax: (55XX11) 4195-5916CNPJ 61.086.823/0001-76 - IND. BRAS.Farm. Resp.: Douglas Pedrassa CRF - SP - 21.172REG. MS 10125310089SACC (Serviço de Atendimento ao Cliente CELM): 0800 553 552Visite nossa home page www.celm.com.brE-mail: [email protected]

II. LIPIDOGRAMAINTRODUÇÃO As lipoproteínas do plasma sangüíneo são complexos macromoleculares constituídos deproteínas

e

lipídeos,

como

triglicerídeos,

colesterol

e

seus

ésteres.

Pela

técnica

de

eletroforese é possível separar quatro frações principais de lipoproteínas: quilomícrons, beta,pré-beta e alfa. AMOSTRA Usar soro fresco livre de hemólise, colhido em, no máximo, 12 horas.

Deve-se evitar o

congelamento da amostra, pois pode ocorrer degradação das lipoproteínas séricas, emespecial se sua concentração estiver aumentada. PROCEDIMENTO 1)

Colocar 90 mL de * tampão tris pH 9,5 gelado (2 a 8

o^ C ), na cuba

Aplicar

μμμμ

L^

de cada soro ou plasma recém-colhido livre de hemólise no filme de

agarose. Aguardar alguns segundos para que o soro penetre no filme e aplicar mais

μμμμ L

de amostra.

Colocar o filme de agarose no porta-filme coincidindo os pólos negativos do filme com acuba. Colocar o porta-filme na cuba e tampá-la. Deixar por

14 minutos a 100 volts.

Retirar a tampa e o porta-filme, colocando-o sobre uma folha de papel de filtro paraeliminar o excesso de tampão das bordas do filme.

Retirar o filme do porta-filme.

Colocar o filme de agarose a 60

oC (

oC a 65

o C), até que o mesmo fique completamente

seco. Sugerimos o uso de secador de cabelos com aquecimento. Este procedimentodeve ser realizado antes da coloração do filme.

Colocar o filme de agarose seco sobre uma folha de papel de filtro e, com o auxílio deuma pipeta, colocar sobre o filme de agarose 5 mL de corante solução trabalho. Nãotocar a superfície da agarose com a ponta da pipeta.

Deixar corando de 2 a 3 minutos, até que o corante comece a precipitar e se torneazulado.

Mergulhar o filme de agarose no descorante (metanol 70%) até que o fundo se torne rosaclaro (alguns segundos).

  1. Retirar o filme de agarose do descorante e colocar numa solução de glicerol a 2% por 15

segundos, SEM AGITAÇÃO.

  1. Secar a 60

oC (

oC a 65

oC) novamente.

  1. Ler no scanner ou no densitômetro à 520 nm. Pode-se ainda fazer a eluição das bandas

com água/metanol/acetato de etila (2,5 / 7,0 / 0, 5, v/v): dissolver cada uma das fraçõesrecortadas em 2 mL do eluente e ler a absorbância em 530 nm.

* Não reutilizar o tampão

Materiais necessários não fornecidos:Corante

  • Fat Red 7 - B (art. 0775 - CELM) - 0,225 g/L em metanol p.a. (solução estoque).

Solução trabalho

  • 10 mL da solução estoque + 2 mL de NaOH 0,1N

Descorante

  • Metanol 70%

VALORES DE REFERÊNCIA Alfa

-^

20,0 a 35,

Pré-beta

-^

10,0 a 25,

Beta

-^

45,0 a 65,

Recomenda-se que cada laboratório estabeleça seus próprios valores de referência. ILUSTRAÇÃO DA SEPARAÇÃO DE LIPOPROTEÍNAS

Nome: Paciente

Frações

Gráfico obtido no aparelho DS-

Gráfico obtido no sistema SE-

REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS 1.

Naoum, P.C.

Eletroforese – Técnicas e Diagnósticos

a^ ed. São Paulo -

Livraria Santos Editora, 1999.

Rancharam, S., Sponzilli, E.E. e Wingerd, J.C.

Serum protein fractions

Effects of oral contraceptives and pregnancy.

Obstet Gynecol,

48(2):211-5, 1976 AUG.